Lab 9: Rychlost Vedení Nervů

Cíle

1. K měření rychlosti vedení v lidské reflexní oblouk, pomocí Achillovy šlachy jako iniciátor reflex a kontrakce lýtkového svalu jako odpověď (extracelulární záznam).
2. K měření prahu, rychlost vedení a refrakterní období sedacího nervu žáby nervy tím, že stimuluje nervy a měření reakcí prostřednictvím externí záznamové elektrody (extracelulární záznam).
3. pro měření prahové hodnoty a rychlosti vedení obrovského axonu žížaly prostřednictvím externích záznamových elektrod.
4. pro měření rychlosti vedení lidského ischiatického nervu pomocí externích záznamových elektrod(extracelulární záznam).

vzruchy v Nervech: Pozadí

neuron je buňka, která je specializovaná pro přenos nervových impulsů. Axon je část neuronu, která vede impulsy; axon je obvykle dlouhý výrůst nebo proces, který přenáší impulsy od buněčného těla neuronu směrem k cílovým buňkám.
nervový impuls, nazývaný také akční potenciál, je signál, který je přenášen podél axonu, který umožňuje nervovým buňkám komunikovat a aktivovat mnoho různých systémů v organismu. Akční potenciál může pocházet z mozku a vést k úmyslnému pohybu nebo může být zapojen do reflexního oblouku, který je nezávislý na mozku. Akční potenciál může být přenášen do svalové buňky, což způsobuje svalovou kontrakci.
neurony mají schopnost generovat akční potenciály. Akční potenciál je způsoben změnou propustnosti neuronové membrány. Tato změna permeability vede ke změně distribuce iontů přes membránu. Změna distribuce iontů vede ke změně elektrického náboje (potenciálu) přes membránu. Změny elektrického potenciálu mohou být experimentálně detekovány, protože akční potenciál prochází podél axonu neuronu.
změny elektrického potenciálu axonu lze detekovat a zobrazit na záznamovém zařízení v laboratoři jednou ze dvou základních metod:

1. Intracelulární záznam: dvě elektrody jsou umístěny na obou stranách membrány neuronu, jedna uvnitř buňky a jedna venku. Změna potenciálního rozdílu mezi elektrodami je zaznamenána, když se ionty pohybují do a ven z buňky. Tato technika se provádí na velkých izolovaných neuronech.
2. Extracelulární záznam: dvojice elektrod je umístěna na vnější straně neuronu. Změna potenciálu mezi oběma elektrodami se měří a zaznamenává jako dvoufázový AP, jak akční potenciál prochází podél neuronu. Tato metoda neměří tok iontů, ale čistý rozdíl v potenciálu, protože akční potenciál prochází nejprve jednou elektrodou a poté druhou elektrodou. Tato metoda má nespornou výhodu, že jej lze použít pro záznam průchodu akčního potenciálu (jako ve svalu) z povrchu těla a je také použit pro záznam akčních potenciálů z celého nervy (na rozdíl od nutnosti punkce jednotlivých neuronů).

V dnešní laboratorní budete používat extracelulární záznam: V žábu a lidských budete nahrávat z nerv, což je svazek neuronů, každý s vlastním prahem, spíše než z jediného neuronu. V Žížalách budete nahrávat z obřích axonů. Budete nejen vizualizovat akční potenciál, ale také určit rychlost, jakou akční potenciál cestuje podél nervu v každém z těchto organismů.

Powerlab bude fungovat jako digitální 2kanálový osciloskop. Čas bude zaznamenán na ose X a napětí na Y. Čas a citlivost lze nastavit na každém kanálu. Užitečnou vlastností Powerlabu je, že operátor může zahájit zametání obrazovky (tj. Toto je známé jako spoušť. Spoušť umožňuje zachytit časové období bezprostředně po události. Je možné “spustit” počítač, začít shromažďovat data (zametat), současně s aplikací podnětu. Lze tedy měřit záznam stimulační události a čas, kdy se objeví akční potenciál (latence). V této aplikaci spouště je počítač nastaven tak, aby generoval jediné zametání po stimulaci lidské Achillovy šlachy i žabího nervu. Čas lze měřit na ose X. Budete používat kanál 1, kde se zobrazí spoušť, a kanál 3, kde budou zaznamenány odpovědi. Nastavení Powerlabu se mírně liší pro záznam žížaly obrovského axonu, ale teorie je podobná.

rychlost vedení akčního potenciálu se stanoví měřením ujeté vzdálenosti (délka nervu v m) a vydělením čas (v sekundách) potřebný k dokončení reflexní oblouk, který se také nazývá latence.

rychlost vedení = vzdálenost (m) / čas (sec).

1. měření vzdálenosti je poměrně jednoduché. To lze provést pomocí pravítka nebo pásky.
2. měření času je složitější. Akční potenciály cestují velmi rychle; proto jsou časy, které mají být měřeny, velmi malé a vyžadují sofistikovanější přístrojové vybavení. Počítač s PowerLab, jako osciloskop, je ideálně hodí pro měření událostí, které se dějí ve velmi krátkém čase.

rychlost vedení konkrétního neuronu koreluje s průměrem nervu a myelinizací. Myelin, látka bohatá na lipidy, působí jako izolace pro zvýšení rychlosti vedení neuronů obratlovců. Bezobratlí nedostatek myelinových neuronů, vzruchy z jejich akčních potenciálů zvyšuje především v důsledku zvýšené axon průměru. Mnoho bezobratlých má specializované” obří ” axony, jako je žížala, které velmi rychle provádějí akční potenciály.

Návrh datové tabulky v laboratoři notebook pro záznam Prahové napětí potřebné k vyvolání akčního potenciálu v žabák a žížala (oba mediální a laterální Obří Axon). Ze tří časovaných pokusů zaznamenejte čas mezi stimulačním artefaktem a akčním potenciálem (latence v ms) a změřte vzdálenost, jak je popsáno v příručce. Vypočítejte rychlost vedení v m/S pro lidský sedací nerv, sedací nerv žáby a mediální a boční obří axony žížaly a zadejte svá data do datového listu třídy. Vypočítejte průměrnou rychlost vedení pro každou z nich pomocí dat třídy.

Rychlost Vedení v Lidské Reflexní Oblouk

Když Achillovy šlachy je natažené poté, co byl využit s reflex kladivo, vyvolaný akční potenciál je veden po noze nahoru do míchy a zpět dolů, kde způsobí gastrocnemius (tele) sval ke kontraktu. Pro stanovení rychlosti vedení se měří vzdálenost, kterou se akční potenciál pohybuje, a čas mezi poklepáním šlachy a kontrakcí svalu se měří pomocí softwaru PowerLab a ADinstruments.

Reflexní Oblouk: Reflexní oblouk je iniciován protažením šlachy, což je účinek, který stimuluje strečové receptory ve svalu. Tyto strečové receptory reagují zahájením akčního potenciálu v senzorických neuronech. Akční potenciál putuje těmito senzorickými neurony do míchy, kde synapse přímo s motorickými neurony. Excitace putuje zpět do svalu gastrocnemius, kde způsobuje kontrakci svalu. Šlacha, která byla původně natažena, se tedy kontrakcí vrací do své původní délky a dokončuje reflexní oblouk.
funkcí tohoto typu reflexního oblouku je udržovat držení těla. Svaly se neustále protahují a vracejí se do původní délky bez zásahu mozku. Všimněte si, že tato odpověď je monosynaptická. Senzorický neuron synapse přímo s motorickým neuronem v míše; není zapojen žádný interneuron.
elektromyogram (EMG): je záznam svalové kontrakce, kterou lze odebrat z kůže nad svalem. Akční potenciál cestuje dolů nerv, přes nerv/svalové spojení a do svalu. Ve svalu se akční potenciál šíří po celém svalu a způsobuje kontrakci svalových vláken. Průchodu akčního potenciálu může být snímán pomocí elektrod umístěných na kůži nad svalem, který při zesílen (jako v EKG) mohou být zobrazeny na obrazovce počítače.
reflexní kladivo: je bicí kladivo používané k testování reflexů. Kladivo, které budete používat, bylo upraveno tak, že když zasáhne šlachu, kladivo uzavře obvod a vygeneruje malý signál. Tento signál se používá ke spuštění zametání počítačem.

Experimentální Postup

1. Seat téma na okraji laboratorní stůl tak, že její nohy jsou volně visící. Připojte dvě předželované elektrody k tělu svalu lýtka (gastrocnemius), trochu vlevo nebo vpravo od středové čáry. Obě elektrody by měly být umístěny tak, aby se jejich vnější okraje dotýkaly svislé čáry na svalu (viz obrázek níže). Na kotníkovou kost by měla být umístěna třetí zemnící elektroda. Připojte kabely ke správným elektrodám: zelená pro Zem (na kotníkové kosti) a černá a bílá k lýtkovému svalu.

C

obr. 9.1. A, schéma reflexního oblouku u člověka. Když úsek receptor je stimulován kladivo, akční potenciál se šíří do senzorických vláken do míchy a synapse na motoru vlákna, akční potenciál pak putuje zpátky dolů nervu způsobit svalové kontrakce pozorujeme jako reflex. B, dvě elektrody jsou umístěny na tele, blízko sebe, jak je znázorněno. Třetí elektroda by měla být umístěna na kostnatém povrchu, jako je kolenní čepice nebo kotník. C, LabChart 8 instalační soubory.

Chcete-li vytvořit záznam EMG:

1. otevřete soubor: “nastavení testu EMG”. Pokud tento soubor nemůžete najít na ploše, zeptejte se svého instruktora.
2. sběr EMG: testovaný subjekt by měl sedět a nohy a nohy by měly být uvolněné. Stiskněte tlačítko START v pravé dolní části obrazovky. Jemně zvedněte prsty subjektu, abyste natáhli Achillovu šlachu na zadní straně nohy, a pevně rap Achillovu šlachu subjektu černou gumovou částí kladiva. Zaznamenejte více EMG zasažením černé gumové části kladiva na Achillovu šlachu a pozorováním reflexu v Ch. 3. Opakujte, dokud nebudete mít 3 reprezentativní EMG.
3. pokud máte dobrou sadu 3 EMG (viz obr. 9.2), změřte čas kurzorem od začátku stimulu (na nulu) do středu prvního vrcholu. Opakujte na různých nahrávkách a průměrně tři.
4. Zaznamenejte data do své laboratorní příručky a do tabulky poskytnuté Vaším instruktorem.
5. Použijte svinovací metr měřit vzdálenost v cm od bodu nárazu na předmět je Achillovy šlachy na přibližné místo, na kterém hrudní koš splňuje páteře (tj. délka senzorické nervy) a pak dolů na první elektrody na gastrocnemius (tj. délka motorického nervu). Schéma, jak toto měření provést, najdete na snímku aplikace PowerPoint poskytnutém Vaším instruktorem.
6. délka záznamu a poté vypočítat a zaznamenat rychlost vedení.

obr. 9.2. Ukázka EMG zaznamenané v počítači pomocí PowerLab. Spouštěcí signál je na vstupu 1 (Ch 1) v čase 0 a EMG je na Ch 3 (tzv. Raw signál). Umístěte značku ” M ” na vrchol prvního vrcholu EMG. Zobrazí čas označuje dobu, která uplynula mezi spouštěcí signál a lýtkového reakci, tj. doba, kterou se akční potenciály šíří podél senzorických neuronů sedacího nervu míchy a po motorické neurony, aby první (horní) elektroda gastrocnemius.

Rychlost Vedení v Žábu Sedacího Nervu

akční potenciál je zahájen v členité sedacího nervu žába (Rana pipiens nebo Xenopus laevis), stimulátor (zařízení pro poskytování přesné elektrické podněty). Akční potenciál se šíří podél nervu a je detekován, jak to prochází dvě vnější elektrody (podle metody 2 je popsáno v úvodu) a zjištěné reakce jsou zesíleny a zobrazeny na obrazovce počítače. Stopa podnětu a reakce v počítači je vyvolána podnětem; měří se čas a vzdálenost a pak lze vypočítat rychlost.

složený akční potenciál: nerv je sbírka axonů mnoha neuronů. Axony mohou mít různé tloušťky, a proto jejich akční potenciály budou mít různé velikosti a rychlosti. Akční potenciály, nahrané z venku nervu (extracelulárně) je známo jako složený akční potenciál, a představuje součet akčních potenciálů vystřelil jednotlivými neurony. (viz obr. 9.3 A).

obr. 9.3. A, schéma dvoufázového akčního potenciálu jako extracelulární záznam nervu. Stimul se aplikuje na levý konec nervu. B, hřbetní pohled na odkrytou žabí levou zadní končetinu a páteř.
ischiatický nerv je velký nerv, který běží od míchy k svalu gastrocnemius. Obsahuje senzorické i motorické neurony(je to nerv, který je stimulován, když natáhnete lidskou Achillovou šlachu). V této laboratoři bude žába anestetizována, obětována a zdvojnásobena (mozek i mícha budou zničeny). Možná budete muset odstranit kůži.

Pitvat Sedacího Nervu

1. Jemně oddělené hřbetní stehenní svaly s prsty a použijte tupý sklo sonda odhalit bílá sedacího nervu a doprovodné cévy (viz Obr. 9.3 B). Uvolněte nerv z okolní tkáně ve stehně pomocí tupého skleněného háčku. Odřízněte svaly a pojivovou tkáň kolem nervu, když držíte nerv z cesty. Snažte se natáhnout nerv a nedotýkejte se nervu čímkoli kovovým, aby nedošlo k poškození nervu.
2. Udržujte nerv vlhký obojživelníky (roztok, který obsahuje ionty ve stejné koncentraci jako v krvi žáby).
3. připevněte nit pevně kolem kolenního konce nervu. Pak odřízněte nerv pod řetězec a co nejblíže ke kolenu.
4. jemně zvedněte nerv zvednutím nitě a poté disekujte nerv na jeho původ v míše. S touto disekcí buďte velmi opatrní, zejména v pánevní oblasti. Udržujte nerv vlhký s prstenci, dokud nebude připraven k umístění do nervové Komory.

nastavení nervové Komory

1. otevřete soubor frog CAP na ploše. Jemně umístěte nerv na prvních pět nebo šest elektrod začínajících na levé straně komory(viz instruktor). Nervový konec na levé straně komory by měl být předním koncem nervu. Přední a zadní konce nervu jsou barevně označeny řetězcem. Pokud si nejste jisti barevným kódováním, navštivte svého instruktora.
2. zakryjte nervovou komoru plastovým víkem a po zavření víka se ujistěte, že nerv je stále v kontaktu s dráty. Připojte stimulační a záznamové elektrody, jak vidíte na fotografiích níže. Na lavičce budete mít také kopii fotografie v modrém pořadači. Než budete pokračovat, zkontrolujte uspořádání elektrod u svého instruktora.

Chcete-li zaznamenat složený akční potenciál

1. , zkontrolujte, zda je soubor nastaven na začátek stimulací 0,05 V (Výška pulsu). Chcete-li stimulovat nerv při tomto počátečním nastavení, stiskněte tlačítko start v pravé dolní části obrazovky.
2. nyní zvyšte napětí výšky impulsu (stimulu) v intervalech 0,05 V kliknutím na šipku nahoru. Neměňte max. hodnoty rychlosti opakování (zpoždění) nebo šířky pulsu (trvání) pro tuto část experimentu. Vše, co budete měnit, je výška pulsu (napětí). Když kliknete na šipku nahoru, amplituda se při každém kliknutí zvýší o 0,01 V, takže budete muset tuto šipku několikrát kliknout. Stiskněte tlačítko start a sledujte stopu na obrazovce. Pokračujte ve zvyšování napětí v 0.05 v přírůstky.
3. nakonec, na prahu, by se složený akční potenciál měl začít objevovat jako průhyb v základní linii.
4. Záznam prahové napětí (pulse height)
5. i Nadále postupně zvyšovat napětí (ale nikdy zvýšit nad 1 V), dokud amplituda složeného akční potenciál přestane zvyšovat (což znamená, že maximální počet nervových vláken, které reagují) . Jako silnější napětí stimulovat další axony, sloučenina akční potenciál poroste v amplitudě.
6. pokud máte dva složené akční potenciály, které dosáhnou stejné (blízké, pokud jemné) špičkové amplitudy, Zaznamenejte napětí.
7. zvolte napětí mírně pod maximem. Při tomto napětí Vygenerujte jeden akční potenciál. Změřte čas kurzorem od začátku stimulu do středu prvního vrcholu dvoufázové odpovědi(viz obrázek 9.4). Zaznamenejte to jako latenci (zpoždění mezi stimulem a iniciací AP) ve své datové tabulce. Vygenerujte další dva akční potenciály při stejném napětí a zaznamenejte jejich hodnotu latence.
8. zkontrolujte vzdálenost mezi druhou stimulační elektrodou a první záznamovou elektrodou (u tohoto zařízení by měla být asi 5 mm). Pomocí této vzdálenosti a zaznamenané hodnoty latence, výpočet rychlosti vedení pro všechny tři zkoušky a průměrné výsledky získat tím vzruchy.

jak může odezva zvýšit amplitudu, když akční potenciál má vlastnosti” všechny nebo žádné”?

tento jev odstupňované odezvy ilustruje rozdíly v prahu, které existují mezi různými velikostmi vláken, které tvoří nerv. Pamatujte, že nahráváte z nervu, velkého svazku neuronů, každý s jiným prahem. Pokud se stimulační napětí zvyšuje pomalu a hladce, můžete pozorovat diskrétní skoky v amplitudě složeného akčního potenciálu, protože se “rekrutují” různé prahové třídy nervových vláken. Jak zvýšíte amplitudu, více neuronů dosáhne svého prahu a přispěje ke zvýšení velikosti akčního potenciálu sloučeniny. Nakonec, jak se zvyšuje stimulační napětí, bude dosaženo bodu, když se vlnová forma akčního potenciálu přestane měnit. V tomto okamžiku jsou stimulována všechna vlákna v nervu schopná reagovat na podnět (obr. 9.4). To je maximální odpověď.

Zaznamenejte a uložte všechny své pokusy na plochu. Je dobré ukládat data často (v nabídce Soubor: Uložit jako) – ve složce lab course na ploše). Nezapomeňte do názvu souboru zahrnout sekci zvířat a laboratoří.

obr. 9.4. Příklad složených akčních potenciálů (horní stopa) při zvyšující se stimulační síle (dolní stopa) zaznamenaných z ischiatického nervu žáby pomocí softwaru LabChart 8. Stopy odpovídající více nahrávkám jsou překrývají. Podněty s větší silou produkují dvoufázové složené akční potenciály s větší amplitudou.

Pro Měření Žáruvzdorných Období
Když se dva podněty jsou aplikovány na nervy ve velmi rychlém sledu, některé nebo všech neuronů, které tvoří nervy jsou schopni reagovat na druhý stimul, protože sodíkové kanály se inaktivují. Jsou refrakterní vůči druhému podnětu.

1. otevřete žába refrakterní soubor. Výška impulsu (amplituda stimulu / napětí) je v tomto souboru přednastavena na 0,5 V a během této části experimentu se nezmění.
2. zkontrolujte, zda je šířka pulzní mezery (interval mezi dvěma impulsy podnětů) nastavena na 7 ms pro spuštění.
3. stiskněte tlačítko start.
4. měly by se objevit dva akční potenciály stejné výšky oddělené 7 ms (obr. 9.5).
5. nyní snižte (šířka pulzní mezery (stimulační interval) mezi dvěma podněty o 0,5 ms kroky kliknutím na šipku dolů. Jak zmenšujete šířku pulzní mezery mezi podněty, začne se snižovat amplituda druhého akčního potenciálu. Zaznamenejte šířku mezery, když pozorujete tento pokles. Toto zpoždění představuje relativní refrakterní období nervu. Co se to děje?
6. Pokračujte ve snižování šířky pulzní mezery. Všimněte si, že možná budete muset snížit o menší intervaly, jak se pulzy přiblíží k sobě.
7. Všimněte si doby, kdy druhý akční potenciál zmizí, všechny neurony jsou refrakterní na druhý stimul.

Obr. 9.5. Složené akční potenciály stimulované dvojitými pulzy demonstrují refrakterní období v sedacím nervu žáby. Stopy získané z více nahrávek pomocí LabChart 8 jsou překrývají.

Vedení Práh a Rychlost v Žížal Nervy

POZNÁMKA: Díly z tohoto postupu jsou upraveny z protokolu napsal zaměstnanci ADInstruments, a za předpokladu, s nákupem PowerLab přístrojové vybavení.
běžné žížaly mají obří vláknový systém sestávající z jediného středního Obřího vlákna a dvou bočních obřích vláken. Obě boční vlákna jsou spojena četnými křížovými spoji a fungují jako jediný axon.

experimentální nastavení

1. umístěte žížalu do Petriho misky obsahující 10% ethanolu ve fyziologickém roztoku žížal. Dokud se přestane pohybovat, i když je sondován); zkontrolujte po 10 minutách a velmi 5 minutách poté. umístěte červa na pitevní misku a dotkněte se hlavy nebo ocasu, pokud vidíte pohyb, umístěte červa zpět do anaethesie.
2. Zkontrolujte připojení drátu (viz obr. 9A)
3. umístěte hřbetní (tmavou) stranu žížaly nahoru na pitevní podnos. Umístěte hlavový konec (s klitellum ) na horní část zásobníku (obr. 9.6). Dávejte pozor, abyste žížalu příliš netáhli, protože by to mohlo poškodit nervovou šňůru.
4. umístěte dva kolíky stimulátoru asi 2 cm pod clitellum. Připojte vodiče stimulátoru přicházející z energetické laboratoře k pitevním kolíkům. Záporný vodič (katoda, Černá) by měl být zadní k kladnému vodiči (anoda, červená).
5. tři záznamové elektrody (G, R1, R2) jsou chlorované stříbrné dráty. Jemně je vložte do šneku, jak je znázorněno na obr. 9.6B v řádu G, R1, R2 ve střední části těla šneku pod zápornou elektrodou. Kolíky mohou být umístěny poměrně blízko u sebe. Umístěte elektrodu R2 asi 0, 5 až 1 centimetr dozadu k elektrodě R1.
6. změřte vzdálenost v mm mezi druhou stimulační elektrodou (Černá katoda) a první záznamovou elektrodou (R1) a zaznamenejte toto měření. Toto je vzdálenost, kterou akční potenciál urazil během záznamu.
7. možná budete muset pravidelně navlhčit celou žížalu 10% roztokem ethanolu / fyziologického roztoku kapátkem. Odstraňte přebytečný fyziologický roztok z červa papírovou tkání.

Nastavení Worm PowerLab B

Obr. 9.6. Nastavení PowerLab pro záznam akčních potenciálů žížaly B. Žížala anatomii a umístění elektrod na žížalu

Stanovení prahové napětí pro mediální a laterální axony, výpočet , rychlost vedení, a sleduje nábor boční obří axon

1. Otevřít WormAP soubor na plochu počítače.
2. klikněte na start. Rozsah se zobrazí jeden sweep. Výchylka těsně po začátku zametání je způsobena rozložením části stimulačního napětí na záznamové elektrody. Říká se tomu stimulační artefakt.
3. Zvyšte výstup o 0.05 voltů kliknutím na šipku amplitudy nahoru v stimulu. Panel.
4. Opakujte kroky 2 a 3 se zvyšuje Amplituda 0,05 voltů s každou zkušební, až uvidíte reakci od střední obří axon.
5. když vidíte odpověď od mediánu Obřího axonu (obr. 9.7), Zaznamenejte prahovou hodnotu. Pokud nevidíte odpověď a používáte podnět vyšší než 1V, požádejte o pomoc.
6. zvyšujte stimul, dokud nepozorujete druhou odpověď s delším latentním obdobím (obr. 9.7). Klikněte na Stop a zaznamenejte tuto prahovou hodnotu pro boční obří vlákna.
7. uložte soubor na plochu.
8. pro výpočet rychlosti vedení umístěte značku na začátek stimulačního artefaktu a kurzor křivky na vrchol akčního potenciálu (obr. 9.7). Přečtěte si časový rozdíl v horní části okna rozsahu.
9. Rozdělit (dříve změřené) vzdálenosti mezi stimulační a nahrávání elektrody tím, že časový rozdíl mezi vrcholy se určují rychlost vedení v mm/ms, což je snadno převést na m/s.

obr. 9.7. Elektrofyziologický záznam z ventrální nervové šňůry žížaly ukazující akční potenciály ze středních a bočních obřích vláken.

10. Zlikvidujte soubor nebo jej umístěte do složky pro vaši laboratorní sekci.

přiřazení

materiál v této laboratoři bude zahrnut do laboratoře praktické (spolu s materiálem z laboratoří 7 & 8). Ujistěte se, že rozumíte pojmům, výpočtům, statistickým testům a grafům.

výsledky:
použijte data z celé třídy k porovnání průměrných rychlostí vedení tří dnes zkoumaných nervů. Proveďte ANOVU porovnávající rychlost vedení (m/s) nervů člověka, žáby a žížaly. Je rozdíl významný na úrovni pravděpodobnosti 0,05? Zdá se, že existuje rozdíl ve vodivosti v nervech člověka, žáby a žížaly?

Diskuze:
Údaje shromážděné v této laboratoři mohou být ve srovnání s dříve dokumentovány vedení sazby nervy širokou škálu obratlovců a bezobratlých živočichů. Jsou vaše data v souladu s tímto širším souborem dat?

obr. 9.8. Rychlost vedení nervových impulzů jako funkce průměru vlákna u různých zvířat. Upraveno z Bullock and Horridge, 1965, struktura a funkce nervového systému Bezobratlých. W. h. Freeman a společnost.

další laboratoře v této sekci

Lab 7: anatomie obratlovců
Lab 8: cirkulace a dýchání obratlovců