Lab 9: ledningshastighed af nerver

mål

  1. at måle ledningshastighed i en menneskelig refleksbue ved hjælp af akillessenen som initiativtager til en refleks og sammentrækning af gastrocnemius-muskelen som respons (ekstracellulær optagelse).
  2. til måling af tærskel, ledningshastighed og ildfast periode af en frøs nerves iskiasnerv ved at stimulere nerven og måle responsen gennem eksterne optageelektroder (ekstracellulær optagelse).
  3. for at måle tærsklen og ledningshastigheden af en regnormgigantakson gennem eksterne optageelektroder.
  4. til måling af ledningshastigheden af den menneskelige iskiasnerv gennem eksterne optageelektroder (ekstracellulær optagelse).

ledningshastighed i nerver: baggrund

en neuron er en celle, der er specialiseret til transmission af nerveimpulser. Aksonen er den del af neuronen, der udfører impulser; aksonet er normalt en lang udvækst eller proces, der bærer impulser væk fra cellelegemet i en neuron mod målceller.
en nerveimpuls, også kaldet et handlingspotentiale, er signalet, der transmitteres langs en akson, der gør det muligt for nerveceller at kommunikere og aktivere mange forskellige systemer i en organisme. Et handlingspotentiale kan stamme fra hjernen og resultere i en bevidst bevægelse, eller de kan være involveret i en refleksbue, der er uafhængig af hjernen. Et handlingspotentiale kan overføres til en muskelcelle, hvilket forårsager muskelsammentrækning.
neuroner har egenskaben at være i stand til at generere handlingspotentialer. Handlingspotentialet er forårsaget af en ændring i neuronmembranpermeabiliteten. Denne ændring i permeabilitet resulterer i en ændring i fordelingen af ioner over membranen. Ændringen i fordelingen af ioner fører til en ændring i elektrisk ladning (potentiale) over membranen. Ændringer i elektrisk potentiale kan detekteres eksperimentelt, når handlingspotentialet passerer langs neuronens akson.
ændringer i aksonets elektriske potentiale kan detekteres og vises på en optageenhed i laboratoriet ved hjælp af en af to grundlæggende metoder:

1. Intracellulær optagelse: to elektroder placeres på hver side af neuronens membran, en inde i cellen og en udenfor. En ændring i potentiel forskel mellem elektroderne registreres, når ionerne bevæger sig ind og ud af cellen. Denne teknik udføres på store, isolerede neuroner.
2. Ekstracellulær optagelse: et par elektroder placeres på ydersiden af neuronen. En ændring i potentialet mellem de to elektroder måles og registreres som en bifasisk AP, når handlingspotentialet passerer langs neuronen. Denne metode måler ikke ionstrøm, men nettodifferencen i potentiale, når handlingspotentialet passerer først den ene elektrode og derefter den anden elektrode. Denne metode har den klare fordel, at den kan bruges til at registrere passagen af et handlingspotentiale (som i en muskel) fra overfladen af kroppen og bruges også til at registrere handlingspotentialer fra hele nerver (i modsætning til at skulle punktere individuelle neuroner).

i dagens laboratorium bruger du ekstracellulær optagelse: i frøen og mennesket optager du fra en nerve, som er et bundt neuroner hver med sin egen tærskel snarere end fra en enkelt neuron. I regnormen optager du fra kæmpe aksoner. Du vil ikke kun visualisere handlingspotentialet, men også bestemme den hastighed, hvormed handlingspotentialet bevæger sig langs en nerve i hver af disse organismer.

Strømlab fungerer som et digitalt 2-kanals oscilloskop. Tid vil blive registreret på H-aksen og spænding på Y. Tid og følsomhed kan justeres på hver kanal. Et nyttigt træk ved Magtlab er, at operatøren kan starte en feje af skærmen (dvs.computeren starter prøveudtagning). Dette er kendt som udløseren. Udløseren giver dig mulighed for at fange tidsperioden umiddelbart efter en begivenhed. Det er muligt at” udløse ” computeren, for at begynde at indsamle data (at feje), samtidig med at stimulus anvendes. Således kan en registrering af den stimulerende begivenhed og det tidspunkt, hvor handlingspotentialet vises (latenstid) måles. I denne anvendelse af udløseren er computeren indstillet til at generere et enkelt feje ved stimulering af den menneskelige akillessene såvel som frøenerven. Tid kan måles på H-aksen. Du bruger kanal 1, hvor udløseren vises, og kanal 3, hvor svarene optages. Den opsatte Kraftlab er lidt anderledes for Regnormens kæmpe aksonoptagelse, men teorien er ens.

handlingspotentialets ledningshastighed bestemmes ved at måle den tilbagelagte afstand (nervens Længde I m) og dividere med den tid (sek), der er taget for at fuldføre refleksbuen, også kaldet latenstiden.

ledningshastighed = afstand (m)/tid (sek).

  1. måling af afstand er relativt ligetil. Det kan gøres ved hjælp af en lineal eller et målebånd.
  2. måling af tid er mere kompliceret. Handlingspotentialer rejser meget hurtigt; derfor er de tidspunkter, der skal måles, meget små og kræver mere sofistikeret instrumentering. Computeren med Strømlab, som oscilloskopet, er ideel til at måle begivenheder, der sker på meget kort tid.

ledningshastigheden af en bestemt neuron er korreleret med nervediameter og myelinering. Myelin, et lipidrigt stof, fungerer som isolering for at øge ledningshastigheden for hvirveldyrneuroner. Hvirvelløse dyr mangler myeliniserede neuroner, og ledningshastigheden af deres handlingspotentialer øges primært som følge af øget aksondiameter. Mange hvirvelløse dyr har specialiserede” kæmpe ” aksoner, som regnormen, der udfører handlingspotentialer meget hurtigt.

udkast til datatabeller i din lab-notesbog for at registrere den tærskelspænding, der er nødvendig for at fremkalde et handlingspotentiale i frøen og regnormen (både medial og lateral kæmpe Akson). Fra de tre tidsbestemte forsøg registreres tiden mellem stimulusartefakt og handlingspotentiale (latenstid i ms) og måler afstanden som beskrevet i manualen. Beregn ledningshastigheden I m / sek for den menneskelige iskiasnerv, frøen iskiasnerven og regnormens mediale og laterale gigantiske aksoner, og indtast dine data på klassedatabladet. Beregn den gennemsnitlige ledningshastighed for hver ved hjælp af klassedataene.

Threshold.jpg
ledningshastighed tabel v2.jpg

ledningshastighed i en menneskelig refleksbue

når akillessenen strækkes efter at være tappet med en reflekshammer, føres det inducerede handlingspotentiale op ad benet til rygmarven og ned igen, hvor det får gastrocnemius (kalv) muskel til at trække sig sammen. For at bestemme ledningens hastighed måles afstanden, som handlingspotentialet bevæger sig, og tiden mellem tapping af senen og sammentrækningen af muskelen måles ved hjælp af programmer til Kraftlab og Adinstrumenter.

Refleksbuen: En refleksbue initieres ved at strække en sene, en handling, der stimulerer strækreceptorer i muskelen. Disse strækreceptorer reagerer ved at indlede et handlingspotentiale i sensoriske neuroner. Handlingspotentialet bevæger sig gennem disse sensoriske neuroner til rygmarven, hvor de synapser direkte med motoriske neuroner. Spændingen rejser tilbage til gastrocnemius muskel, hvor det forårsager sammentrækning af musklen. Således returneres senen, der oprindeligt blev strakt, til sin oprindelige længde gennem sammentrækning og afslutter refleksbuen.
funktionen af denne type refleksbue er at opretholde kropsholdning. Musklerne strækker sig løbende og vender tilbage til deres oprindelige længde uden hjernens indblanding. Bemærk, at dette svar er monosynaptisk. Den sensoriske neuron synapser direkte med den motoriske neuron i rygmarven; der er ingen interneuron involveret.
Elektromyogrammet (EMG): er en registrering af en muskelkontraktion, der kan tages fra huden over en muskel. Et handlingspotentiale bevæger sig ned ad en nerve, gennem en nerve / muskelforbindelse og ind i en muskel. I musklen spreder handlingspotentialet sig gennem muskelen og forårsager sammentrækning af muskelfibrene. Passagen af handlingspotentialerne kan registreres af elektroder placeret på huden over muskelen, som når de forstærkes (som i EKG) kan vises på en computerskærm.
Reflekshammeren: er en slaghammer, der bruges til at teste reflekser. Hammeren, som du vil bruge, er blevet ændret, så når hammeren rammer senen, lukker hammeren et kredsløb og genererer et lille signal. Dette signal bruges til at udløse en feje af computeren.

eksperimentel Procedure

  1. sæt motivet på kanten af laboratoriebænken, så hendes ben hænger frit. Fastgør to præ-jelled elektroder til kroppen af kalven (gastrocnemius) muskel, lidt til venstre eller højre for midterlinjen. De to elektroder skal placeres, så deres ydre kanter berører en lodret linje på muskelen (se figur nedenfor). En tredje jordelektrode skal placeres på ankelbenet. Fastgør kablerne til de korrekte elektroder: grøn til jorden (på ankelbenet) og sort / hvid til kalvemuskelen.

111F11.HumanReflexArc.jpg
C

EMG kanal indstilling F15.png  EMG-prøveudtagning F15.png

Fig. 9.1. En, Diagram af en refleksbue i et menneske. Når strækreceptoren stimuleres af hammeren, bevæger handlingspotentialet de sensoriske fibre op til rygmarven og synapser på motorfibrene handlingspotentialet bevæger sig derefter tilbage ned ad nerven for at forårsage den muskelsammentrækning, vi observerer som en refleks. B, placeres to elektroder på kalven tæt på hinanden som vist. Den tredje elektrode skal placeres på en knoglet overflade, såsom knæhætten eller ankelen. C, LabChart 8 installationsfiler.

at lave en EMG-optagelse:

  1. Åbn filen:”EMG testindstillinger”. Hvis du ikke kan finde denne fil på skrivebordet, skal du spørge din instruktør.
  2. for at samle en EMG: testpersonen skal sidde og hendes ben og fødder afslappet. Tryk på START nederst til højre på skærmen. Løft forsigtigt motivets tæer for at strække akillessenen på bagsiden af hendes ben, og rap fast akillessenen på motivet med den sorte gummidel af hammeren. Optag flere EMG ‘ er ved at ramme den sorte gummidel af hammeren på akillessenen og observere refleksen i Ch. 3. Gentag, indtil du har 3 repræsentative EMG ‘ er.
  3. når du har et godt sæt med 3 EMG ‘ er (Se Fig. 9.2), måle tiden med markøren fra starten af stimulus (ved nul) til midten af den første top. Gentag på forskellige optagelser og gennemsnit tre.
  4. Optag data i din lab manual og på regnearket leveres af din instruktør.
  5. brug målebåndet til at måle afstanden i centimeter fra påvirkningspunktet på motivets akillessene til det omtrentlige punkt, hvor ribbenburet møder rygsøjlen (dvs.længden af den sensoriske nerve) og derefter ned til den første elektrode på gastrocnemius (dvs. længden af den motoriske nerve). Du kan se et diagram over, hvordan du foretager denne måling, i Dias fra din instruktør.
  6. Optag længde og derefter beregne og registrere ledningshastigheden.

EMG-Sample-F15.png

Fig. 9.2. En prøve af en EMG optaget på computeren ved hjælp af Strømlab. Triggersignalet er på Input 1 (Ch 1) på tidspunktet 0, og EMG er på Ch 3 (kaldet rå Signal). Placer markøren” M “øverst på EMG’ s første top. Den viste tid angiver den tid, der er gået mellem triggersignalet og gastrocnemius-responsen, dvs.den tid, det tager af handlingspotentialerne at forplante sig langs de sensoriske neuroner i iskiasnerven til rygmarven og langs motorneuronerne til den første (øverste) elektrode i gastrocnemius.

ledningshastighed i en Frøskiasnerv

et handlingspotentiale initieres i den dissekerede iskiasnerv af en frø (Rana pipiens eller Ksenopus laevis) af en stimulator (en enhed til levering af præcise elektriske stimuli). Handlingspotentialet bevæger sig langs nerven og detekteres, når det passerer to eksterne elektroder (ifølge metode 2 beskrevet i indledningen), og det detekterede respons forstærkes og vises på computerskærmen. Sporet på computeren af stimulus og respons udløses af stimulus; tid og afstand måles, og hastigheden kan derefter beregnes.

sammensat handlingspotentiale: en nerve er en samling af aksonerne i mange neuroner. Aksonerne kan have forskellige tykkelser, og derfor vil deres handlingspotentialer have forskellige størrelser og hastigheder. Handlingspotentialerne, registreret udefra af nerven (ekstracellulært) er kendt som et sammensat handlingspotentiale og repræsenterer summen af handlingspotentialerne fyret af individuelle neuroner. (se Fig. 9.3 a).

111F11.FrogNerve.jpg

Fig. 9.3. Et Diagram over et bifasisk handlingspotentiale som en ekstracellulær optagelse af en nerve. Stimuleringen påføres den venstre ende af nerven. B, Dorsal udsigt over eksponeret frø venstre bagben og rygsøjle.
iskiasnerven er den store nerve, der løber fra rygmarven til gastrocnemius-muskelen. Den indeholder både sensoriske og motoriske neuroner (det er nerven, der stimuleres, når du strækker den menneskelige akillessene). I dette laboratorium vil frøen være bedøvet, ofret og dobbelt pithed (både hjernen og rygmarven vil være blevet ødelagt). Det kan være nødvendigt at fjerne huden.

for at dissekere iskiasnerven

  1. Adskil forsigtigt de dorsale lårmuskler med fingrene og brug en stump glassonde til at afsløre den hvide iskiasnerv og ledsagende blodkar (se Fig. 9.3 B). Frigør nerven fra det omgivende væv i låret ved hjælp af en stump glaskrog. Skær væk muskel og bindevæv omkring nerven, mens du holder nerven ude af vejen. Prøv ikke at strække nerven og undgå at røre nerven med noget metal for at undgå at beskadige nerven.
  2. hold nerven fugtig med amfibiske ringere (en opløsning, der indeholder ioner i samme koncentration som i frøens blod).
  3. Bind en tråd tæt omkring knæenden af nerven. Skær derefter nerven under strengen og så tæt på knæet som muligt.
  4. løft nerven forsigtigt ved at løfte tråden og dissekere nerven til dens oprindelse i rygmarven. Vær meget forsigtig med denne dissektion, især i bækkenområdet. Hold nerven fugtig med ringe, indtil den er klar til at blive placeret i nervekammeret.

opsætning af Nervekammeret

  1. Åbn frog CAP-filen på skrivebordet. Placer nerven forsigtigt over de første fem eller seks elektroder, der starter ved venstre side af kammeret (se instruktør). Nerveenden på venstre side af kammeret skal være den forreste ende af nerven. Den forreste og bageste ende af nerven er farvekodet med streng. Se din instruktør, hvis du er usikker på farvekodningen.
  2. dæk nervekammeret med plastlåget, og sørg for, at nerven stadig er i kontakt med ledningerne, når du lukker låget. Tilslut stimulerende og optageelektroder, som du ser på billederne nedenfor. Du vil også have en kopi af billedet i det blå bindemiddel på din bænk. Tjek din elektrode arrangement med din instruktør, før du fortsætter.

Frog Nerve Opsætning.jpg

for at registrere et sammensat handlingspotentiale

  1. Kontroller, at filen er indstillet til at starte med en stimulering på 0,05 V (pulshøjde). For at stimulere nerven ved denne indledende indstilling skal du trykke på startknappen nederst til højre på skærmen.
  2. Forøg nu pulshøjden (stimulus) spænding i 0,05 V intervaller ved at klikke på pil op. Skift ikke maks. værdier for gentagelseshastighed (forsinkelse) eller pulsbredde (varighed) for denne del af eksperimentet. Alt du vil ændre er pulshøjden (spænding). Når du klikker på pil op, øges amplituden med 0,01 V med hvert klik, så du bliver nødt til at klikke på denne pil flere gange. Tryk på start og observere spor på skærmen. Fortsæt med at øge spændingen i 0.05 v intervaller.
  3. til sidst, ved tærsklen, bør det sammensatte handlingspotentiale begynde at fremstå som en afbøjning i basislinjen.
  4. Optag tærskelspændingen (pulshøjde)
  5. fortsæt med gradvist at øge spændingen (men aldrig øge den over 1 V), indtil amplituden af det sammensatte handlingspotentiale ophører med at stige (hvilket indikerer, at den maksimale # af nervefibre reagerer) . Da stærkere spændinger stimulerer yderligere aksoner, vil det sammensatte handlingspotentiale vokse i amplitude.
  6. når du har to sammensatte handlingspotentialer, der når den samme (luk hvis fin) spidsamplitude, skal du registrere spændingen.
  7. vælg en spænding lidt under maksimum. Generer et handlingspotentiale ved denne spænding. Mål tiden med markøren fra starten af stimulus til midten af den første top af det bifasiske respons (se figur 9.4). Optag dette som latenstid (forsinkelsen mellem en stimulus og indledningen af en AP) i din datatabel. Generer yderligere to handlingspotentialer ved samme spænding og registrer deres latensværdi.
  8. Kontroller afstanden mellem den anden stimulerende elektrode og den første optageelektrode (skal være ca.5 mm med dette apparat). Brug denne afstand og dine registrerede latensværdier til at beregne ledningshastigheden for alle tre forsøg og gennemsnit dine resultater for at opnå en gennemsnitlig ledningshastighed.

Hvordan kan responsen øges i amplitude, når et handlingspotentiale har “alle eller ingen” egenskaber?

dette graderede responsfænomen illustrerer forskellene i tærskel, der findes blandt de forskellige størrelser af fibre, der udgør nerven. Husk, du optager fra en nerve, et stort bundt neuroner, hver med en anden tærskel. Hvis stimulusspændingen øges langsomt og jævnt, kan du observere diskrete spring i amplituden af det sammensatte handlingspotentiale, da forskellige tærskelklasser af nervefibre “rekrutteres”. Når du øger amplituden, når flere neuroner deres Tærskel og bidrager til stigningen i størrelsen af det sammensatte handlingspotentiale. Til sidst, når stimulusspændingen øges, nås et punkt, når bølgeformen af handlingspotentialet holder op med at ændre sig. På dette tidspunkt stimuleres alle fibrene i nerven, der er i stand til at reagere på stimulus (Fig 9.4). Dette er et maksimalt svar.

Optag og gem alle dine forsøg på skrivebordet. Det er en god ide at gemme data ofte (under menuen File: save as) –I lab course-mappen på skrivebordet). Sørg for at medtage dit dyr og lab sektion i dit filnavn.

Frog APs til manuel.jpg

Fig. 9.4. Et eksempel på sammensatte handlingspotentialer (øvre spor) ved stigende stimulusstyrke (nedre spor) registreret fra en frøs iskiasnerv ved hjælp af programmet LabChart 8. Spor svarende til flere optagelser er overlejret. Stimuli med større styrke producerer bifasiske sammensatte handlingspotentialer med større amplitude.

for at måle den ildfaste periode
, når to stimuli påføres nerven i meget hurtig rækkefølge, er nogle eller alle neuroner, der udgør nerven, ikke i stand til at reagere på den anden stimulus, fordi natriumkanalerne inaktiveres. De er ildfaste over for den anden stimulus.

  1. Åbn frøen ildfast fil. Pulshøjden (stimulusamplitude/spænding) er forudindstillet i denne fil til 0,5 V og ændres ikke under denne del af eksperimentet.
  2. Kontroller, at pulsgapsbredden (intervallet mellem de to stimuluspulser) er indstillet til 7 ms for at starte.
  3. tryk på start.
  4. to handlingspotentialer i samme højde adskilt af 7 ms skal vises (Fig. 9.5).
  5. sænk nu (pulsgabsbredde (stimulusinterval) mellem de to stimuli med 0,5 ms trin ved at klikke på pil ned. Når du reducerer pulsgabsbredden mellem stimuli, begynder amplituden af det andet handlingspotentiale at falde. Optag afstanden bredde, når du observerer dette fald. Denne forsinkelse repræsenterer den relative ildfaste periode af nerven. Hvad sker der?
  6. fortsæt med at reducere pulsspaltets bredde. Bemærk, at du muligvis skal falde med mindre intervaller, når pulserne kommer tættere på hinanden.
  7. Bemærk det tidspunkt, hvor det andet handlingspotentiale forsvinder, alle neuroner er ildfaste over for den anden stimulus.

Frog RP til manuel.jpg

Fig. 9.5. Sammensatte handlingspotentialer stimuleret af tvillingpulser demonstrerer den ildfaste periode i en frøs iskiasnerv. Spor opnået fra flere optagelser ved hjælp af LabChart 8 er overlejret.

Ledningstærskel og hastighed i regnorm nerver

Bemærk: dele af denne procedure ændres fra en protokol skrevet af medarbejdere i Adinstrumenter og leveres med køb af Kraftlab-instrumenteringen.
almindelige regnorme har et kæmpe fibersystem bestående af en enkelt median gigantisk fiber og to laterale gigantiske fibre. De to laterale fibre er forbundet med adskillige tværforbindelser og fungerer som en enkelt akson.

eksperimentel opsætning

  1. læg din regnorm i en petriskål, der indeholder 10% ethanol i regnormsaltopløsning. Lad regnormen blive fuldt bedøvet (dvs.indtil den holder op med at bevæge sig, selv når den undersøges); kontroller efter 10 minutter og meget 5 minutter efter det. Placer ormen på dissekeringsbakken og rør ved hovedet eller halen, hvis du ser bevægelse placere ormen tilbage i anæstesien.
  2. kontroller ledningsforbindelsen (se Fig. 9A)
  3. Placer regnormens dorsale (mørke) side opad på din dissekeringsbakke. Placer hovedenden (med clitellum ) øverst på bakken (fig 9.6). Pas på ikke at strække regnormen for langt, da dette kan beskadige nervesnoren.
  4. Placer to stimulatorstifter omkring 2 cm under klitoris. Tilslut stimulatorledningerne, der kommer fra strømlaboratoriet, til dissekeringsstifterne. Den negative bly (katode, sort) skal være posterior til den positive bly (anode, rød).
  5. de tre optageelektroder (G, R1, R2) er chlorerede sølvtråde. Indsæt dem forsigtigt i ormen som vist i Fig. 9.6B i størrelsesordenen G, R1, R2 i den centrale del af ormens krop under den negative elektrode. Stifterne kan placeres ret tæt sammen. Placer R2-elektroden omkring 0,5 til 1 centimeter bagud i forhold til R1-elektroden.
  6. Mål afstanden I mm mellem den anden stimulerende elektrode (sort katode) og den første optageelektrode (R1), og registrer denne måling. Dette er den afstand, som handlingspotentialet rejste under optagelsen.
  7. du skal muligvis regelmæssigt fugte hele regnormen med 10% ethanol/saltopløsning ved hjælp af en pipette. Blot overskydende saltvand fra ormen med et papirvæv.

EnOpsætning Af Ormen.jpg
B opsætning af Ormelektrode1.jpg

Fig. 9.6. En opsætning til optagelse af regnormsaktionspotentialer B. Jordormanatomi og elektrodeplacering på regnormen

bestemmelse af tærskelspændingen for mediale og laterale aksoner, beregning , ledningshastighed og og observation af rekruttering af den laterale gigantiske akson

  1. Åbn Ormap-fil på computerens skrivebord.
  2. Klik på start. Omfanget vil vise et feje. Afbøjningen lige efter fejningens start skyldes spredning af en del af stimulusspændingen til optageelektroderne. Det kaldes stimulus artefakt.
  3. Forøg output med 0.05 volt ved at klikke på Amplitude pil op i Stim. Panel.
  4. Gentag trin 2 og 3 for at øge amplituden med 0,05 volt med hvert forsøg, indtil du ser et svar fra median kæmpe akson.
  5. når du ser et svar fra medianen kæmpe akson (Fig. 9.7), registrer tærskelværdien. Hvis du ikke ser et svar, og du bruger en stimulus på mere end 1V, skal du bede om hjælp.
  6. bliv ved med at øge stimulansen, indtil du observerer et andet svar med en længere latent periode (Fig. 9.7). Klik på Stop og registrer denne tærskel for de laterale gigantiske fibre.
  7. Gem din fil på skrivebordet.
  8. for at beregne ledningshastighed skal du placere markøren ved starten af stimulusartefakt og Bølgeformmarkøren på handlingspotentialets top (Fig. 9.7). Læs tidsforskellen i den øverste del af Omfangsvinduet.
  9. del den (tidligere målte) afstand mellem stimulus-og optageelektroderne med tidsforskellen mellem toppe for at bestemme ledningshastigheden i mm/ms, som let konverteres til m/s.

WormAPa2.jpg
Fig. 9.7. Elektrofysiologisk optagelse fra regnormens ventrale nervesnor, der viser handlingspotentialer fra median-og laterale gigantiske fibre.

10. Kasser din fil, eller læg den i mappen til dit lab-afsnit.

opgave

materiale i dette laboratorium vil blive inkluderet i laboratoriet praktisk (sammen med materialet fra labs 7 & 8) . Sørg for, at du forstår de begreber, beregninger, statistiske tests og graftegning, der er dækket.

resultater:
Brug data fra hele klassen til at sammenligne de gennemsnitlige ledningshastigheder for de tre nerver, der undersøges i dag. Udfør en ANOVA, der sammenligner ledningshastigheden (m/s) af nerverne hos mennesker, frø og regnorm. Er forskellen signifikant på 0,05 sandsynlighedsniveauet? Synes der at være en forskel i ledningsevne i nerverne hos mennesket, frøen og regnormen?

Diskussion:
Data indsamlet i dette laboratorium kan sammenlignes med tidligere dokumenterede ledningshastigheder for nerverne hos en lang række hvirveldyr og hvirvelløse dyr. Er dine data i overensstemmelse med dette bredere datasæt?

FiberDiameter.jpg

Fig. 9.8. Hastighed af nerveimpulsledning som en funktion af fiberdiameter i en række dyr. Modificeret fra Bullock and Horridge, 1965, struktur og funktion af nervesystemet hos hvirvelløse dyr. Freeman og kompagni.

andre laboratorier i dette afsnit

Lab 7: hvirveldyr anatomi
Lab 8: hvirveldyr cirkulation og Respiration

Skriv et svar

Din e-mailadresse vil ikke blive publiceret.