Laboratorio 9: Velocidad de Conducción de los Nervios

Objetivos

1. Medir la velocidad de conducción en un arco reflejo humano, utilizando el tendón de Aquiles como iniciador de un reflejo y la contracción del músculo gastrocnemio como respuesta (registro extracelular).
2. Medir el umbral, la velocidad de conducción y el período refractario del nervio ciático de un nervio de rana estimulando el nervio y midiendo la respuesta a través de electrodos de registro externos (registro extracelular).
3. Para medir el umbral y la velocidad de conducción de un axón gigante de lombriz de tierra a través de electrodos de grabación externos.
4. Para medir la velocidad de conducción del nervio ciático humano a través de electrodos de registro externos (registro extracelular).

Velocidad de conducción en los nervios: Fondo

Una neurona es una célula especializada en la transmisión de impulsos nerviosos. El axón es la parte de la neurona que conduce los impulsos; el axón es por lo general una consecuencia larga, o proceso, que transporta impulsos desde el cuerpo celular de una neurona hacia las células diana.
Un impulso nervioso, también llamado potencial de acción, es la señal que se transmite a lo largo de un axón que permite a las células nerviosas comunicarse y activar muchos sistemas diferentes en un organismo. Un potencial de acción puede originarse en el cerebro y resultar en un movimiento deliberado o pueden estar involucrados en un arco reflejo que es independiente del cerebro. Un potencial de acción se puede transmitir a una célula muscular, causando contracción muscular.
Las neuronas tienen la propiedad de ser capaces de generar potenciales de acción. El potencial de acción es causado por un cambio en la permeabilidad de la membrana neuronal. Este cambio en la permeabilidad resulta en un cambio en la distribución de iones a través de la membrana. El cambio en la distribución de iones conduce a un cambio en la carga eléctrica (potencial) a través de la membrana. Los cambios en el potencial eléctrico se pueden detectar experimentalmente a medida que el potencial de acción pasa a lo largo del axón de la neurona.
Los cambios en el potencial eléctrico del axón se pueden detectar y mostrar en un dispositivo de registro en el laboratorio mediante uno de dos métodos básicos:

1. Registro intracelular: Se colocan dos electrodos a cada lado de la membrana de la neurona, uno dentro de la célula y otro fuera. Se registra un cambio en la diferencia de potencial entre los electrodos a medida que los iones entran y salen de la célula. Esta técnica se realiza en neuronas grandes y aisladas.
2. Registro extracelular: Se coloca un par de electrodos en el exterior de la neurona. Un cambio en el potencial entre los dos electrodos se mide y se registra como un AP bifásico a medida que el potencial de acción pasa a lo largo de la neurona. Este método no mide el flujo de iones, sino la diferencia neta de potencial, ya que el potencial de acción pasa primero por un electrodo y luego por el otro electrodo. Este método tiene la clara ventaja de que se puede usar para registrar el paso de un potencial de acción (como en un músculo) de la superficie del cuerpo y también se usa para registrar potenciales de acción de nervios enteros (en contraste con tener que perforar neuronas individuales).

En el laboratorio de hoy usarás el registro extracelular: En la rana y el humano, grabarás desde un nervio, que es un paquete de neuronas, cada una con su propio umbral, en lugar de una sola neurona. En la lombriz de tierra, grabarán axones gigantes. No solo visualizará el potencial de acción, sino que también determinará la velocidad a la que el potencial de acción viaja a lo largo de un nervio en cada uno de estos organismos.

Powerlab actuará como un osciloscopio digital de 2 canales. El tiempo se registrará en el eje X y el voltaje en el eje Y. El tiempo y la sensibilidad se pueden ajustar en cada canal. Una característica útil de PowerLab es que el operador puede iniciar un barrido de la pantalla (es decir, el ordenador inicia el muestreo). Esto se conoce como el DISPARADOR. El disparador le permite capturar el período de tiempo inmediatamente después de un evento. Es posible “activar” la computadora, para comenzar a recopilar datos (para barrer), al mismo tiempo que se aplica el estímulo. Por lo tanto, se puede medir un registro del evento estimulante y el momento en que aparece el Potencial de Acción (latencia). En esta aplicación del gatillo, la computadora está configurada para generar un solo barrido al estimular el tendón de aquiles humano, así como el nervio de la rana. El tiempo se puede medir en el eje X. Usarás el Canal 1, donde se mostrará el disparador, y el Canal 3, donde se registrarán las respuestas. La configuración de PowerLab es ligeramente diferente para la grabación de axones gigantes de lombriz de tierra, pero la teoría es similar.

La velocidad de conducción del potencial de acción se determina midiendo la distancia recorrida (longitud del nervio en m) y dividiéndola por el tiempo (seg) necesario para completar el arco reflejo, también llamado latencia.

Velocidad de conducción = distancia (m) / tiempo (seg).

1. La medición de la distancia es relativamente sencilla. Se puede hacer usando una regla o una cinta métrica.
2. La medición del tiempo es más complicada. Los potenciales de acción viajan muy rápidamente; por lo tanto, los tiempos a medir son muy pequeños y requieren instrumentación más sofisticada. La computadora con PowerLab, al igual que el osciloscopio, es ideal para medir eventos que ocurren en un período de tiempo muy corto.

La velocidad de conducción de una neurona en particular se correlaciona con el diámetro del nervio y la mielinización. La mielina, una sustancia rica en lípidos, actúa como aislamiento para aumentar la velocidad de conducción de las neuronas de los vertebrados. Los invertebrados carecen de neuronas mielinizadas, y la velocidad de conducción de sus potenciales de acción aumenta principalmente como resultado del aumento del diámetro del axón. Muchos invertebrados tienen axones “gigantes” especializados, como la lombriz de tierra, que conducen los potenciales de acción muy rápidamente.

Haga tablas de datos en su cuaderno de laboratorio para registrar el voltaje de umbral necesario para obtener un potencial de acción en la rana y la lombriz de tierra (Axón gigante medial y lateral). De los tres ensayos cronometrados, registre el tiempo entre el artefacto de estímulo y el potencial de acción (latencia en ms) y mida la distancia como se describe en el manual. Calcule la velocidad de conducción en m/s para el nervio ciático humano, el nervio ciático de la rana y los axones gigantes mediales y laterales de la lombriz de tierra e ingrese sus datos en la hoja de datos de la clase. Calcule la velocidad de conducción promedio para cada uno utilizando los datos de clase.

Velocidad de Conducción en un Arco Reflejo Humano

Cuando el tendón de Aquiles se estira después de ser golpeado con un martillo reflejo, el potencial de acción inducido se conduce hacia arriba de la pierna hasta la médula espinal y hacia abajo donde hace que el músculo gastrocnemio (pantorrilla) se contraiga. Para determinar la velocidad de conducción, se mide la distancia que recorre el potencial de acción y el tiempo entre el golpeteo del tendón y la contracción del músculo se mide utilizando el software PowerLab y ADInstruments.

El Arco Reflejo: Un arco reflejo se inicia estirando un tendón, una acción que estimula los receptores de estiramiento en el músculo. Esos receptores de estiramiento responden iniciando un potencial de acción en las neuronas sensoriales. El potencial de acción viaja a través de esas neuronas sensoriales hasta la médula espinal, donde sinaptan directamente con las neuronas motoras. La excitación viaja de regreso al músculo gastrocnemio, donde causa la contracción del músculo. Así, el tendón que se estiró inicialmente se devuelve a su longitud original a través de la contracción, completando el arco reflejo.
La función de este tipo de arco reflejo es mantener la postura. Los músculos se estiran continuamente y vuelven a su longitud original sin la intervención del cerebro. Tenga en cuenta que esta respuesta es monosináptica. La neurona sensorial sinapta directamente con la neurona motora en la médula espinal; no hay interneurona involucrada.
El Electromiograma (EMG): es un registro de una contracción muscular que se puede tomar de la piel por encima de un músculo. Un potencial de acción viaja por un nervio, a través de una unión nervio/músculo y hacia un músculo. En el músculo, el potencial de acción se extiende por todo el músculo causando la contracción de las fibras musculares. El paso de los potenciales de acción se puede detectar mediante electrodos colocados en la piel por encima del músculo, que cuando se amplifican (como en el ECG) se pueden mostrar en una pantalla de computadora.
El martillo de reflejos: es un martillo de percusión utilizado para probar reflejos. El martillo que usarás ha sido modificado para que cuando golpee el tendón, el martillo cierre un circuito y genere una pequeña señal. Esta señal se usa para activar un barrido por parte de la computadora.

Procedimiento experimental

1. Coloque al sujeto en el borde del banco de laboratorio para que sus piernas cuelguen libremente. Coloque dos electrodos pre-gelificados en el cuerpo del músculo de la pantorrilla (gastrocnemio), un poco a la izquierda o a la derecha de la línea media. Los dos electrodos deben colocarse de manera que sus bordes exteriores se toquen en una línea vertical en el músculo (ver la figura a continuación). Se debe colocar un tercer electrodo de tierra en el hueso del tobillo. Conecte los cables a los electrodos correctos: verde para el suelo (en el hueso del tobillo) y blanco y negro para el músculo de la pantorrilla.

C

Fig. 9.1. A, Diagrama de un arco reflejo en un humano. Cuando el receptor de estiramiento es estimulado por el martillo, el potencial de acción viaja hacia arriba por las fibras sensoriales hasta la médula espinal y sinapsis en las fibras motoras, el potencial de acción luego viaja hacia abajo por el nervio para causar la contracción muscular que observamos como un reflejo. B, Se colocan dos electrodos en la pantorrilla, uno cerca del otro como se muestra. El tercer electrodo debe colocarse sobre una superficie ósea, como la rodillera o el tobillo. C, Archivos de configuración de LabChart 8.

Para hacer una GRABACIÓN EMG:

1. Abra el archivo: “Configuración de prueba EMG”. Si no puede encontrar este archivo en el escritorio, pregunte a su profesor.
2. Para recoger un EMG: El sujeto de prueba debe estar sentado y sus piernas y pies relajados. Pulse INICIO en la parte inferior derecha de la pantalla. Levante suavemente los dedos de los pies del sujeto para estirar el tendón de Aquiles en la parte posterior de la pierna y golpee firmemente el tendón de Aquiles del sujeto con la parte de goma negra del martillo. Grabe múltiples EMG golpeando la parte de goma negra del martillo en el tendón de Aquiles y observando el reflejo en el Cap. 3. Repita hasta que tenga 3 EMG representativos.
3. Cuando tiene un buen juego de 3 EMG (consulte la Fig. 9.2), mide el tiempo con el cursor desde el inicio del estímulo (en cero) hasta la mitad del primer pico. Repite en diferentes grabaciones y promedia tres.
4. Registre datos en su manual de laboratorio y en la hoja de cálculo proporcionada por su instructor.
5. Use la cinta métrica para medir la distancia en centímetros desde el punto de impacto en el tendón de Aquiles del sujeto hasta el punto aproximado en el que la caja torácica se encuentra con la columna vertebral (es decir, la longitud del nervio sensorial) y luego hasta el primer electrodo en el gastrocnemio (es decir, la longitud del nervio motor). Consulte la diapositiva de PowerPoint proporcionada por su instructor para obtener un diagrama de cómo realizar esta medición.
6. Registre la longitud y luego calcule y registre la velocidad de conducción.

Fig. 9.2. Una muestra de un EMG grabado en la computadora usando PowerLab. La señal de disparo está en la entrada 1 (Ch 1) al tiempo 0 y el EMG está en Ch 3 (llamada Señal Raw). Coloque el marcador ” M ” en la parte superior del primer pico de la EMG. El tiempo mostrado indica el tiempo transcurrido entre la señal de activación y la respuesta del gastrocnemio, es decir, el tiempo que tardan los potenciales de acción en propagarse a lo largo de las neuronas sensoriales del nervio ciático hasta la médula espinal y a lo largo de las neuronas motoras hasta el primer electrodo (superior) del gastrocnemio.

Velocidad de conducción en un Nervio Ciático de Rana

Un potencial de acción se inicia en el nervio ciático disecado de una rana (Rana pipiens o Xenopus laevis) mediante un estimulador (un dispositivo para suministrar estímulos eléctricos precisos). El potencial de acción viaja a lo largo del nervio y se detecta a medida que pasa por dos electrodos externos (de acuerdo con el método 2 descrito en la introducción) y la respuesta detectada se amplifica y se muestra en la pantalla de la computadora. El rastro en la computadora del estímulo y la respuesta es desencadenado por el estímulo; el tiempo y la distancia se miden y la velocidad se puede calcular.

Potencial de Acción compuesto: Un nervio es una colección de axones de muchas neuronas. Los axones pueden tener diferentes espesores y, por lo tanto, sus potenciales de acción tendrán diferentes tamaños y velocidades. Los potenciales de acción, registrados desde el exterior del nervio (extracelularmente) se conocen como un potencial de acción compuesto, y representan la suma de los potenciales de acción disparados por neuronas individuales. (véase la Fig. 9.3 A).

Fig. 9.3. A, Diagrama de un potencial de acción bifásico como registro extracelular de un nervio. El estímulo se aplica al extremo izquierdo del nervio. B, Vista dorsal de la extremidad trasera izquierda y la columna vertebral de la rana expuesta.
El nervio ciático es el nervio grande que va desde la médula espinal hasta el músculo gastrocnemio. Contiene neuronas sensoriales y motoras (es el nervio que se estimula cuando se estira el tendón de Aquiles humano). En este laboratorio, la rana habrá sido anestesiada, sacrificada y doble médula (tanto su cerebro como su médula espinal habrán sido destruidos). Es posible que tenga que extirpar la piel.

Para Diseccionar el Nervio Ciático

1. Separe suavemente los músculos dorsales del muslo con los dedos y use una sonda de vidrio roma para revelar el nervio ciático blanco y los vasos sanguíneos que lo acompañan (ver Fig. 9.3 B). Libere el nervio del tejido circundante en el muslo con un gancho de vidrio romo. Corte el músculo y el tejido conectivo alrededor del nervio a medida que mantiene el nervio fuera del camino. Trate de no estirar el nervio y evite tocarlo con cualquier metal para evitar dañarlo.
2. Mantenga el nervio húmedo con Anillos de Anfibios (una solución que contiene iones en la misma concentración que en la sangre de la rana).
3. Ate un hilo firmemente alrededor del extremo de la rodilla del nervio. Luego corta el nervio debajo de la cuerda y lo más cerca posible de la rodilla.
4. Levante suavemente el nervio levantando el hilo y luego diseccione el nervio hasta su origen en la médula espinal. Tenga mucho cuidado con esta disección, especialmente en el área pélvica. Mantenga el nervio húmedo con anillos hasta que esté listo para ser colocado en la cámara nerviosa.

Configuración de la Cámara nerviosa

1. Abra el archivo DE tapa de rana en el escritorio. Coloque suavemente el nervio sobre los primeros cinco o seis electrodos comenzando en el lado izquierdo de la cámara (consulte instructor). El extremo nervioso del lado izquierdo de la cámara debe ser el extremo anterior del nervio. Los extremos anterior y posterior del nervio están codificados por colores con una cuerda. Consulte a su instructor si no está seguro del código de colores.
2. Cubra la cámara nerviosa con la tapa de plástico y asegúrese de que el nervio siga en contacto con los cables después de cerrar la tapa. Conecte los electrodos de estimulación y grabación como se ve en las fotos a continuación. También tendrá una copia de la foto en la carpeta azul en su banco. Verifique la disposición de los electrodos con su instructor antes de continuar.

Para registrar un Potencial de Acción Compuesto

1. Compruebe que el archivo está configurado para comenzar con una estimulación de 0,05 V (altura de pulso). Para estimular el nervio en esta configuración inicial, presione el botón de inicio en la parte inferior derecha de la pantalla.
2. Ahora aumente el voltaje de altura de pulso (estímulo) en intervalos de 0,05 V haciendo clic en la flecha hacia arriba. No cambie el máximo. valores de frecuencia de repetición (retardo) o ancho de pulso (duración) para esta parte del experimento. Todo lo que va a cambiar es la altura del pulso (voltaje). Al hacer clic en la flecha hacia arriba, la amplitud aumentará en 0,01 V con cada clic, por lo que deberá hacer clic en esta flecha varias veces. Pulse inicio y observe el rastro en la pantalla. Continúe aumentando el voltaje en 0.Incrementos de 05 V.
3. Finalmente, en el umbral, el potencial de acción compuesto debe comenzar a aparecer como una desviación en el valor basal.
4. Registre el voltaje de umbral (altura de pulso)
5. Continúe aumentando gradualmente el voltaje (pero nunca lo aumente por encima de 1 V) hasta que la amplitud del potencial de acción compuesto deje de aumentar (lo que indica que el número máximo de fibras nerviosas está respondiendo) . A medida que los voltajes más fuertes estimulan axones adicionales, el potencial de acción del compuesto crecerá en amplitud.
6. Cuando tenga dos potenciales de acción compuestos que alcancen la misma amplitud de pico (cerca si está bien), registre el voltaje.
7. Elija un voltaje ligeramente por debajo del máximo. Genere un potencial de acción a este voltaje. Mida el tiempo con el cursor desde el inicio del estímulo hasta la mitad del primer pico de la respuesta bifásica (ver figura 9.4). Registre esto como la latencia (el retraso entre un estímulo y el inicio de un punto de acceso) en su tabla de datos. Genere dos potenciales de acción más a este mismo voltaje y registre su valor de latencia.
8. Compruebe la distancia entre el segundo electrodo estimulante y el primer electrodo de registro (debe ser de unos 5 mm con este aparato). Usando esta distancia y sus valores de latencia registrados, calcule la velocidad de conducción para los tres ensayos y promedie sus resultados para obtener una velocidad de conducción media.

¿Cómo puede aumentar la amplitud de la respuesta cuando un potencial de acción tiene propiedades de “todo o nada”?

Este fenómeno de respuesta graduada ilustra las diferencias en el umbral que existe entre los diferentes tamaños de fibras que componen el nervio. Recuerde, está grabando desde un nervio, un gran paquete de neuronas, cada una con un umbral diferente. Si el voltaje de estímulo aumenta lenta y suavemente, puede observar saltos discretos en la amplitud del potencial de acción compuesto a medida que se “reclutan”diferentes clases de umbral de fibras nerviosas. A medida que aumenta la amplitud, más neuronas alcanzan su umbral y contribuyen al aumento del tamaño del potencial de acción compuesto. Eventualmente, a medida que aumenta el voltaje del estímulo, se alcanzará un punto cuando la forma de onda del potencial de acción deje de cambiar. En este punto, se estimulan todas las fibras del nervio capaces de responder al estímulo (Fig.9.4). Esta es una respuesta máxima.

Grabe y guarde todas sus pruebas en el escritorio. Es una buena idea guardar datos con frecuencia (en el menú Archivo: guardar como), en la carpeta del curso de laboratorio en el escritorio). Asegúrate de incluir la sección de animales y laboratorio en el nombre de tu archivo.

Fig. 9.4. Un ejemplo de potenciales de acción compuestos (traza superior) a la fuerza de estímulo creciente (traza inferior) registrados desde el nervio ciático de una rana utilizando el software LabChart 8. Las trazas correspondientes a múltiples grabaciones se superponen. Los estímulos de mayor fuerza producen potenciales de acción compuestos bifásicos de mayor amplitud.

Para medir el Período Refractario
Cuando se aplican dos estímulos al nervio en una sucesión muy rápida, algunas o todas las neuronas que componen el nervio no pueden responder al segundo estímulo porque los canales de sodio están inactivados. Son refractarios al segundo estímulo.

1. Abra el archivo refractario frog. La altura del pulso (amplitud/voltaje del estímulo) está preestablecida en este archivo a 0,5 V y no se cambiará durante esta parte del experimento.
2. Compruebe que el ancho de la brecha de pulso (el intervalo entre los dos pulsos de estímulo) está establecido en 7 ms para comenzar.
3. Pulse inicio.
4. Deben aparecer dos potenciales de acción de la misma altura separados por 7 ms (Fig. 9.5).
5. Ahora disminuya el ancho de la brecha de pulso (intervalo de estímulo) entre los dos estímulos en pasos de 0,5 ms haciendo clic en la flecha hacia abajo. A medida que disminuye el ancho de la brecha de pulso entre los estímulos, la amplitud del segundo potencial de acción comienza a disminuir. Registre el ancho del espacio cuando observe esta disminución. Este retraso representa el período refractario relativo del nervio. ¿Qué está pasando?
6. Continúe disminuyendo el ancho de la brecha de pulso. Tenga en cuenta que es posible que deba disminuir en intervalos más pequeños a medida que los pulsos se acerquen.
7. Tenga en cuenta el momento en que el segundo potencial de acción desaparece, todas las neuronas son refractarias al segundo estímulo.

Fig. 9.5. Los potenciales de acción compuestos estimulados por pulsos gemelos demuestran el período refractario en el nervio ciático de una rana. Los rastros obtenidos de múltiples grabaciones utilizando LabChart 8 se superponen.

Umbral de conducción y Velocidad en Nervios de lombrices de tierra

NOTA: Partes de este procedimiento se modifican de un protocolo escrito por miembros del personal de ADInstruments, y se proporcionan con la compra de la instrumentación PowerLab.
Las lombrices de tierra comunes tienen un sistema de fibra gigante que consiste en una sola fibra gigante mediana y dos fibras gigantes laterales. Las dos fibras laterales están unidas por numerosas conexiones cruzadas y funcionan como un solo axón.

Configuración experimental

1. Coloque la lombriz de tierra en una placa de Petri que contenga un 10% de etanol en solución salina para lombrices de tierra. Deje que la lombriz de tierra se anestesie completamente (es decir, hasta que deje de moverse incluso cuando se la sondee); verifique después de 10 minutos y muy 5 minutos después de eso. coloque el gusano en la bandeja de disección y toque la cabeza o la cola, si ve movimiento, vuelva a colocar el gusano en la anaetesia.
2. Comprobar la conexión del cable (ver Fig. 9A)
3. Coloque la lombriz dorsal (oscura) hacia arriba en la bandeja de disección. Coloque la cabeza final (con el clitellum ) en la parte superior de la bandeja (fig 9.6). Tenga cuidado de no estirar la lombriz demasiado, ya que esto puede dañar el cordón nervioso.
4. Coloque dos alfileres estimuladores a unos 2 cm por debajo del clítelo. Conecte los cables estimuladores procedentes del laboratorio de potencia a los pines de disección. El cable negativo (cátodo, negro) debe ser posterior al cable positivo (ánodo, rojo).
5. Los tres electrodos de grabación (G, R1, R2) son cables de plata clorados. Insértelos suavemente en el gusano como se muestra en la Fig. 9.6B en el orden de G, R1, R2 en la sección central del cuerpo del gusano debajo del electrodo negativo. Los alfileres se pueden colocar bastante juntos. Coloque el electrodo R2 aproximadamente de 0,5 a 1 centímetro por detrás del electrodo R1.
6. Mida la distancia en mm entre el segundo electrodo estimulante (cátodo negro) y el primer electrodo de registro (R1) y registre esta medición. Esta es la distancia que recorrió el potencial de acción durante la grabación.
7. Es posible que deba humedecer periódicamente toda la lombriz con la solución salina/etanol al 10% utilizando un cuentagotas. Seque el exceso de solución salina del gusano con un pañuelo de papel.

A Configuración de PowerLab de gusano B

Fig. 9.6. Una configuración PowerLab para registrar potenciales de acción de lombrices de tierra B. Anatomía de la lombriz de tierra y colocación de electrodos en la lombriz de tierra

Determinación del voltaje de umbral para los axones medial y lateral, cálculo , velocidad de conducción y observación del reclutamiento del axón gigante lateral

1. Abra el archivo de mapa de gusano en el escritorio de la computadora.
2. Haga clic en inicio. El visor mostrará un barrido. La desviación justo después del inicio del barrido es causada por la propagación de parte de la tensión de estímulo a los electrodos de grabación. Se llama artefacto de estímulo.
3. Aumente la salida en 0.05 voltios haciendo clic en la flecha de amplitud hacia arriba en el Estímulo. Panel.
4. Repita los pasos 2 y 3 aumentando la Amplitud en 0,05 voltios con cada ensayo hasta que vea una respuesta del axón gigante medio.
5. Cuando vea una respuesta del axón gigante mediano (Fig. 9.7), registre el valor de umbral. Si no ve una respuesta y está utilizando un estímulo de más de 1 V, pida ayuda.
6. Siga aumentando el estímulo hasta que observe una segunda respuesta con un período de latencia más largo (Fig. 9.7). Haga clic en Detener y registre este umbral para las fibras gigantes laterales.
7. Guarde el archivo en el escritorio.
8. Para calcular la velocidad de conducción, coloque el Marcador al comienzo del artefacto de estímulo y el Cursor de forma de onda en el pico de potencial de acción (Fig. 9.7). Lea la diferencia horaria en la parte superior de la ventana del Alcance.
9. Divida la distancia (medida previamente) entre los electrodos de estímulo y de registro por la diferencia de tiempo entre los picos para determinar la velocidad de conducción en mm/ms, que se convierte fácilmente en m/s.

Fig. 9.7. Registro electrofisiológico del cordón nervioso ventral de la lombriz mostrando potenciales de acción de las fibras gigantes medianas y laterales.

10. Deseche el archivo o colóquelo en la carpeta de la sección de laboratorio.

ASIGNACIÓN

El material de este laboratorio se incluirá en el práctico de laboratorio (junto con el material de laboratorios 7 & 8) . Asegúrese de comprender los conceptos, cálculos, pruebas estadísticas y gráficos cubiertos.

Resultados:
Utilice datos de toda la clase para comparar las velocidades medias de conducción de los tres nervios examinados hoy. Realice un ANOVA comparando la velocidad de conducción (m/s) de los nervios de humanos, ranas y lombrices de tierra. Es la diferencia significativa en el nivel de probabilidad de 0.05? ¿Parece haber una diferencia en la conductividad en los nervios del ser humano, la rana y la lombriz de tierra?

Discusión:
Los datos recopilados en este laboratorio pueden compararse con las tasas de conducción de nervios previamente documentadas de una amplia variedad de animales vertebrados e invertebrados. ¿Son sus datos consistentes con este conjunto de datos más amplio?

Fig. 9.8. Velocidad de conducción del impulso nervioso en función del diámetro de la fibra en una variedad de animales. Modificado de Bullock and Horridge, 1965, Estructura y función del Sistema Nervioso de Invertebrados. W. H. Freeman and Company.

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