Zachowanie gniazda ekstrakcyjnego za pomocą wtyczki kolagenowej połączonej z plazmą bogatopłytkową (PRP): porównawcze badanie kliniczno-radiograficzne | Jiotower
dyskusja
zęby są często ekstrahowane w klinice chirurgii jamy ustnej. Często konieczne jest, aby wyodrębnić zęby, gdy stają się one nieodnawialne, co może być spowodowane różnymi procesami chorobowymi, takimi jak przewlekłe zapalenie przyzębia, rozległe zmiany próchnicowe, patologia okołowierzchołkowa i złamania korzeni z powodu urazu lub jakiejkolwiek innej przyczyny.10,11 ekstrakcja zęba, nawet przy zachowaniu dużej ostrożności i po zabiegu atraumatycznym, prowadzi do utraty kości wyrostka zębodołowego.1 ta utrata kości występuje zarówno na wysokości, jak i szerokości, a utrata kości jest bardzo szybka w ciągu pierwszych 6-12 miesięcy po ekstrakcji zęba.12-14 wykazano, że w ciągu pierwszych 6-12 miesięcy po ekstrakcji można stracić odpowiednio do 40% i 60% wysokości i szerokości kości.14
w ciągu ostatnich dziesięcioleci wypróbowano różne techniki ze zmiennymi wskaźnikami sukcesu w celu zachowania kości wyrostka zębodołowego. Różne procedury i techniki alveolar ridge zachowania obejmują techniki regeneracyjne przy użyciu autoprzeszczepów, allogeniczne, i ksenogeniczne z lub bez wtyczki kolagenu, resorbable / non-resorbable membrany, natychmiastowe implanty, i zastosowanie PRP.1,4,6,8
technika regeneracyjna polega na zastosowaniu różnych materiałów, które są umieszczane w ubytku powstałym w kości wyrostka zębodołowego po ekstrakcji zęba.Materiały te obejmują kość autologiczną, allogeniczny materiał kostny i przeszczep ksenologiczny.7,8,11,17 materiały te mogą być następnie pokryte błoną lub tkanką autologiczną, aby zapobiec ich utracie.8,18 materiały te wykazały obiecujące wyniki w zachowaniu kości wyrostka zębodołowego.Ubytek tkanki kostnej w miejscach szczepionych wynosi <0,5 mm wysokości i < 2 mm szerokości; jednakże miejsca nieszczepione wykazują do 1 mm utraty wysokości i 2-6 mm szerokości w ciągu jednego roku po ekstrakcji zęba.1,2,17
nowatorską techniką konserwacji gniazd jest użycie wtyczki kolagenowej, która jest cylindryczną gąbką kolagenową dopasowaną do gniazda ekstrakcyjnego.1,3,5 materiał ten idealnie pasuje do gniazda ekstrakcyjnego jako rusztowanie i służy jako środek chemotaktyczny dla fibroblastów.1 dodatkowo pomaga w hemostazie w miejscu ekstrakcji.1 w ciągu ostatniej dekady wypróbowano kilka odmian technik konserwacji gniazd, w których wykorzystano materiały do przeszczepu kości i kolagen w różnych kombinacjach, znanych jako ” technika wtyczek gniazdowych.”1 technika ta okazała się wiarygodna, z przewidywalnymi wynikami w zakresie zachowania kości wyrostka zębodołowego.
różni lekarze szeroko stosowali natychmiastowe umieszczenie implantu jako technikę zachowania wyrostka zębodołowego z zmiennymi wynikami.16,20 sukces tej metody zależy od rodzaju zastosowanego implantu, jakości kości, czynników ogólnoustrojowych pacjenta, obecności wszelkich szkodliwych nawyków, takich jak palenie tytoniu, oraz obszaru kości wyrostka zębodołowego, w którym wszczepiony jest implant.16 niektórzy autorzy donoszą, że wady okołoimplantacyjne goją się poprzez tworzenie tkanki łącznej zamiast kontaktu kości z implantem.Jednakże ostatnie badania wykazały porównywalny poziom kości wokół implantów umieszczonych bezpośrednio po ekstrakcji i implantów umieszczonych w zagojonych gniazdach ekstrakcyjnych.Należy jednak ostrożnie rozważyć natychmiastowe umieszczenie implantu po ekstrakcji w przedniej części szczęki, ponieważ ten region charakteryzuje się wyższym wskaźnikiem niepowodzenia implantu.12 Inną Wadą zachowania kości wyrostka zębodołowego za pomocą implantów jest to, że są one kosztowne i mogą nie być wykonalną opcją dla wielu osób, które nie mogą sobie na nie pozwolić.
osocze bogatopłytkowe jest źródłem czynników wzrostu (pochodzący z płytek i transformujący czynnik wzrostu-beta), który otrzymuje się przez odwirowanie i zagęszczenie płytek przez odwirowanie gradientowe gęstości.Zastosowanie PRP w stomatologii zostało wprowadzone około dwie dekady temu. Powodem włączenia tego nowego materiału do stomatologii było stężenie różnych czynników wzrostu, takich jak płytkowe czynniki wzrostu (PDGF), nabłonkowe czynniki wzrostu (EGF), naczyniowe Czynniki wzrostu śródbłonka (VEGF) i transformujący czynnik wzrostu-beta (TGF-β) w PRP, które są ponad czterokrotnie większe niż w pełnej krwi.9 PDGF postulowano promowanie regeneracji tkanek miękkich i twardych. Czynniki wzrostu, takie jak EGF i VEGF, promują gojenie tkanek miękkich, indukując proliferację nabłonka i Neo-unaczynienie.9,22 czynniki wzrostu,takie jak PDGF, promują proliferację szpiku kostnego i osteoblastów oraz pomagają w tworzeniu osteoidów, 20 promując w ten sposób gojenie kości. TGF-β jest kolejnym niezbędnym czynnikiem wzrostu obecnym w PRP, który należy do nadrodziny czynników wzrostu, których BMPs są również częścią. Te czynniki wzrostu, podobne do PDGF, promują proliferację komórkową, stymulują produkcję matrycy i kierują różnicowaniem w kierunku chrząstki lub kości.9,21,22
w niniejszym badaniu wykorzystano wtyczkę kolagenową połączoną z PRP jako materiał do przeszczepu do konserwacji gniazda. Żadne wcześniejsze badania nie wykorzystały tej kombinacji do zachowania gniazda. Uzasadnieniem zastosowania tej kombinacji było to, że łączy ona zdolności gojenia tkanek miękkich i twardych PRP z kolagenem i udostępnia ją w gnieździe ekstrakcyjnym, co nie jest możliwe, gdy PRP jest stosowany sam (ponieważ PRP po aktywacji tworzy żelową masę, którą trudno jest zawrzeć w gniazdach pęcherzykowych). Z drugiej strony kolagen stanowi rusztowanie w gnieździe ekstrakcyjnym i pomaga w osteoprzewodowaniu, a w połączeniu z PRP pomaga utrzymać go w gnieździe pęcherzykowym.1,4 połączenie obu tych materiałów wydawało się logiczne, aby sprawdzić właściwości obu materiałów w zachowaniu gniazda. Połączenie to było bezpieczne, ponieważ PRP uzyskano przez odwirowanie autologicznej krwi pacjentów9, a zastosowana w tym badaniu wtyczka kolagenowa pochodziła z wysoko oczyszczonego kolagenu typu 1 pochodzenia rybnego, który jest antygenowo obojętny i nie wywołuje reakcji nadwrażliwości.19 jest stosunkowo tańszy w porównaniu z innymi technikami konserwacji gniazd.
różni autorzy zaproponowali różne protokoły przygotowania PRP. Niektórzy autorzy sugerują jedną metodę spinu, podczas gdy inni sugerują dwie metody spinu z różnymi rpms.9,21,22 jednak liczba obrotów zależy od rodzaju użytej wirówki.22 niektóre wirówki, które są specjalnie zaprojektowane do przygotowania PRP, kończą procedurę w jednym cyklu.21,22 protokół zastosowany w niniejszym badaniu obejmował dwa cykle. Pierwszy spin, tj. soft spin, został przeprowadzony przy 2500 obr. / min przez 10 minut, a następnie drugi spin, tj. hard spin, przy 3400 obr. / min przez 10 minut, co jest zgodne z innymi badaniami.9,21,22
parametrem ocenianym w profilu tkanek miękkich było gojenie dziąseł. Nie wykazywał statystycznie istotnej różnicy w porównaniu pomiędzy miejscami badania i kontroli (P>0,05). Można to ponownie przypisać umieszczeniu szwów w miejscach badania i kontroli, oprócz selekcji pacjentów, którzy byli wolni od patologii przyzębia lub okołowierzchołkowej w miejscach badania i kontroli.1
w celu oceny profilu tkanki twardej w miejscach szczepionych i nie szczepionych oceniano wysokość kości wyrostka zębodołowego i szerokość kości wyrostka zębodołowego. Różni autorzy oceniali również te same parametry, aby zmierzyć ilość dostępnej kości do umieszczenia implantu.1,3,7 w niniejszym badaniu wysokość kości wyrostka zębodołowego mierzono radiologicznie (przy użyciu RVG), stosując technikę długiego stożka, zgodną z wcześniejszymi badaniami.2 wraz z RVG zastosowano siatkę z milimetrową milimetrową do standaryzacji radiogramu, uwzględnienia wszelkich zniekształceń i pomiaru wysokości kości wyrostka zębodołowego. Odległość między dwoma kwadratami radiopaque w siatce wynosiła 1 mm.
w niniejszym badaniu stwierdzono statystycznie istotną różnicę w wysokości Kości między miejscami przeszczepionymi i nieszczepionymi w punkcie początkowym oraz 3-i 6 – miesięcznym odstępie czasowym pooperacyjnym (P<0,001), z większą utratą kości w miejscach nieszczepionych w porównaniu do miejsc szczepionych. Szerokość kości wyrostka zębodołowego mierzono klinicznie za pomocą suwmiarek kostnych na trzech różnych poziomach (crestal, mid-root i apical level). Stwierdzono zmniejszenie szerokości kości po trzech i sześciu miesiącach zarówno w miejscach ekstrakcji szczepionych, jak i nieszczepionych. Zmniejszenie szerokości w miejscach szczepionych było o około 1 mm mniejsze niż w miejscach nie szczepionych. Różnica nie była jednak statystycznie istotna (P>0, 05). Inną różnicą, którą zaobserwowano podczas porównywania miejsc ekstrakcji szczepionych i nieszczepionych, była większa resorpcja kości w regionie środka korzenia w miejscach nieszczepionych po sześciu miesiącach. Ta resorpcja w miejscach ekstrakcji bez szczepienia była statystycznie istotna w porównaniu do miejsc szczepienia. Wyniki te nie są zgodne z wcześniejszymi badaniami, ponieważ Literatura sugeruje, że po zaszczepieniu gniazda występuje znacząca różnica w szerokości między miejscami szczepionymi a miejscami nieszczepionymi, przy czym miejsca szczepione wykazują znacznie mniejszą resorpcję kości niż miejsca nieszczepione.1,6,7 w niniejszym badaniu nie zaobserwowano istotnej różnicy w szerokości kości pomiędzy miejscami ekstrakcji szczepionej i nie szczepionej. Powodem tego może być użycie przerwanych szwów nad gniazdem ekstrakcyjnym, umieszczonych, aby zapobiec przemieszczeniu przeszczepu. Mogło to wywierać pewien nacisk na kość wyrostka, powodując resorpcję, której można uniknąć poprzez umieszczenie poziomego materaca lub ośmiu szwów.
technika wtyczki gniazda, jak każda procedura, ma również pewne ograniczenia. Technika ta nie może być stosowana w obszarach, w których płytka policzkowa kości została złamana.1,17 w takich obszarach materiał przeszczepu kości musi być wspierany przez błonę barierową, a wyniki nie są przewidywalne. Inną Wadą jest to, że technika ta jest przeciwwskazana w obszarach ostrej infekcji, ponieważ w takich przypadkach może nastąpić szybkie rozpuszczenie gąbki kolagenowej i uszkodzenie materiału przeszczepionego.1,17,18 kolejnym czynnikiem, który należy wziąć pod uwagę,jest uniknięcie lub ograniczenie unoszenia się płatów w miejscu ekstrakcji, ponieważ ogranicza to resorpcję kości.8,19
ograniczeniami badania są niewielkie rozmiary próbki i brak stosowania bardziej precyzyjnych metod oceny objętości kości, takich jak CBCT.
