Laboratório 9: Velocidade de Condução dos Nervos

Objetivos

1. Para medir a velocidade de condução no humano, reflexo do arco, usando o tendão de Aquiles como o iniciador de um reflexo de contração do músculo gastrocnêmio como a resposta (extracelular de gravação).Para medir o limiar, a velocidade de condução e o período refratário do nervo ciático de um nervo sapo, estimulando o nervo e medindo a resposta através de eletrodos de gravação externa (gravação extracelular).
2. para medir o limiar e a velocidade de condução de um axon gigante da minhoca através de eléctrodos de gravação externos.
3. para medir a velocidade de condução do nervo ciático humano através de eléctrodos de gravação externos (gravação extracelular).

velocidade de condução nos nervos: fundo

um neurônio é uma célula especializada para a transmissão de impulsos nervosos. O axon é a parte do neurônio que conduz impulsos.; o axon é geralmente um longo crescimento, ou processo, que leva impulsos para longe do corpo celular de um neurônio em direção às células alvo.
um impulso nervoso, também chamado de potencial de ação, é o sinal que é transmitido ao longo de um axônio que permite que as células nervosas se comuniquem e ativem muitos sistemas diferentes em um organismo. Um potencial de ação pode ser originado no cérebro e resultar em um movimento deliberado ou eles podem estar envolvidos em um arco reflexo que é independente do cérebro. Um potencial de ação pode ser transmitido para uma célula muscular, causando contração muscular.
os neurônios têm a propriedade de serem capazes de gerar potenciais de ação. O potencial de acção é causado por uma alteração na permeabilidade da membrana do neurónio. Esta alteração na permeabilidade resulta numa alteração na distribuição de iões através da membrana. A mudança na distribuição de íons leva a uma mudança na carga elétrica (potencial) através da membrana. Mudanças no potencial elétrico podem ser detectadas experimentalmente à medida que o potencial de ação passa ao longo do axônio do neurônio.
as alterações no potencial eléctrico do axon podem ser detectadas e apresentadas num dispositivo de gravação em laboratório através de um de dois métodos básicos .:

1. Gravação intracelular: dois eletrodos são colocados em ambos os lados da membrana do neurônio, um dentro da célula e outro fora. Uma mudança na diferença potencial entre os eletrodos é registrada à medida que os íons se movem para dentro e para fora da célula. Esta técnica é realizada em neurônios grandes e isolados.
2. Gravação extracelular: um par de eletrodos é colocado no exterior do neurônio. Uma mudança no potencial entre os dois eletrodos é medida e registrada como uma AP bifásica à medida que o potencial de ação passa ao longo do neurônio. Este método não mede o fluxo iônico, mas a diferença líquida no potencial à medida que o potencial de ação passa primeiro um eletrodo e, em seguida, o outro eletrodo. Este método tem a vantagem distinta de que pode ser usado para registrar a passagem de um potencial de ação (como em um músculo) a partir da superfície do corpo e também é usado para registrar potenciais de ação de nervos inteiros (em contraste com ter que perfurar neurônios individuais).

no laboratório de hoje você estará usando gravação extracelular: no sapo e no ser humano você estará gravando a partir de um nervo, que é um feixe de neurônios cada um com seu próprio limiar, em vez de um único neurônio. Na minhoca, vais gravar a partir de axons gigantes. Você não só visualiza o potencial de ação, mas também determina a velocidade a que o potencial de ação viaja ao longo de um nervo em cada um desses organismos.

Powerlab vai atuar como um osciloscópio digital de 2 canais. O tempo será gravado no eixo X e a tensão no Y. O tempo e a sensibilidade podem ser ajustados em cada canal. Uma característica útil do PowerLab é que o operador pode iniciar uma varredura da tela (ou seja, o computador inicia a amostragem). Isto é conhecido como o gatilho. O gatilho permite capturar o período de tempo imediatamente após um evento. É possível “ativar” o computador, começar a coletar dados (varrer), ao mesmo tempo que o estímulo é aplicado. Assim, um registro do evento estimulante e o tempo em que o potencial de ação aparece (latência) pode ser medido. Nesta aplicação do gatilho, o computador é definido para gerar uma única varredura após a estimulação do tendão de Aquiles humano, bem como o nervo sapo. O tempo pode ser medido no eixo X. Você estará usando o canal 1, onde o gatilho será exibido, e o Canal 3, onde as respostas serão gravadas. O conjunto PowerLab é ligeiramente diferente para a gravação axon gigante da minhoca, mas a teoria é semelhante.

a velocidade de condução do potencial de acção é determinada medindo a distância percorrida (comprimento do nervo em m) e dividindo pelo tempo (s) tomado para completar o arco reflexo, também chamado de latência.

velocidade de condução = distância (m) / Tempo (s).

1. A Medição da distância é relativamente simples. Pode ser feito usando uma régua ou uma medida de fita.
2. a medição do tempo é mais complicada. Potencial de Acção viajar muito rapidamente; portanto, os tempos a serem medidos são muito pequenos e requerem instrumentação mais sofisticada. O computador com PowerLab, como o osciloscópio, é ideal para medir eventos que acontecem em um curto período de tempo.

a velocidade de condução de um neurônio particular está correlacionada com o diâmetro do nervo e mielinação. A mielina, uma substância rica em lípidos, actua como isolamento para aumentar a velocidade de condução dos neurónios vertebrados. Os invertebrados não possuem neurônios mielinados, e a velocidade de condução de seus potenciais de ação aumenta principalmente como resultado do aumento do diâmetro do axônio. Muitos invertebrados têm axônios especializados “gigantes”, como a minhoca, que conduzem potenciais de ação muito rapidamente.

rascunhe tabelas de dados no seu bloco de notas para registar a tensão limiar necessária para provocar um potencial de acção na RÃ e na minhoca (ambos medial e lateral gigante Axon). A partir dos três ensaios cronometrados registra o tempo entre o artefato de estímulo e o potencial de ação (latência em ms) e mede a distância como descrito no manual. Calcule a velocidade de condução em M / S para o nervo ciático humano, o nervo ciático da rã, e os axônios gigantes mediais e laterais da minhoca e introduza os seus dados na ficha de dados da classe. Calcular a velocidade média de condução para cada um usando os dados da classe.

velocidade de condução em um arco de reflexo humano

quando o tendão de Aquiles é esticado após ser batido com um martelo de reflexo, o potencial de ação induzida é conduzido até a perna até a medula espinhal e de volta para baixo, onde faz com que o músculo gastrocnêmio (vitelo) se contraia. Para determinar a velocidade de condução, a distância que o potencial de ação viaja é medida e o tempo entre o toque do tendão e a contração do músculo é medido usando PowerLab e ADinstruments software.

O Arco De Reflexo: Um arco de reflexo é iniciado por esticar um tendão, uma ação que estimula os receptores de esticamento no músculo. Esses receptores de estiramento respondem iniciando um potencial de ação nos neurônios sensoriais. O potencial de ação viaja através desses neurônios sensoriais para a medula espinhal, onde Sinapse diretamente com neurônios motores. A excitação viaja de volta para o músculo gastrocnêmio, onde causa a contração do músculo. Assim, o tendão que foi inicialmente esticado é devolvido ao seu comprimento original através da contração, completando o arco reflexo.
a função deste tipo de arco reflexo é manter a postura. Os músculos estão continuamente se esticando e retornando ao seu comprimento original sem a intervenção do cérebro. Note que esta resposta é monossináptica. Os neurônios sensoriais sinapses diretamente com o neurônio motor na medula espinhal; não há interneuron envolvido.
o eletromiograma( EMG): é um registro de uma contração muscular que pode ser tirada da pele acima de um músculo. Um potencial de ação percorre um nervo, através de uma junção nervo/músculo e em um músculo. No músculo o potencial de ação se espalha por todo o músculo causando contração das fibras musculares. A passagem dos potenciais de ação pode ser sentida por eletrodos colocados na pele acima do músculo, que quando amplificados (como no ECG) podem ser exibidos em uma tela de computador.
o martelo de reflexo: é um martelo de percussão usado para testar reflexos. O martelo que você vai usar foi modificado de modo que quando atinge o tendão, o martelo fecha um circuito e gera um pequeno sinal. Este sinal é usado para activar uma varredura pelo computador.

procedimento Experimental

1. sentar o sujeito na borda do banco de laboratório para que suas pernas estejam penduradas livremente. Anexar dois eletrodos pré-jelados ao corpo do músculo gastrocnemius, um pouco à esquerda ou à direita da linha média. Os dois eléctrodos devem ser colocados de modo a que as suas arestas exteriores se toquem numa linha vertical no músculo (ver figura abaixo). Um terceiro eletrodo de terra deve ser colocado no osso do tornozelo. Ligar os cabos aos eléctrodos correctos: verde para o solo (no osso do tornozelo) e preto e branco ao músculo da cria.

C

Fig. 9.1. A, Diagrama de um arco de reflexo num humano. Quando o receptor de alongamento é estimulado pelo martelo, o potencial de ação viaja até as fibras sensoriais para a medula espinhal e sinapses nas fibras motoras o potencial de ação, em seguida, viaja de volta para o nervo para causar a contração muscular que observamos como um reflexo. B, dois eletrodos são colocados sobre o bezerro, perto um do outro como mostrado. O terceiro eléctrodo deve ser colocado numa superfície óssea, como a rótula ou o tornozelo. C, LabChart 8, prepara os ficheiros.

para fazer uma gravação EMG:

1. abra o ficheiro: “EMG test settings”. Se não conseguir encontrar este ficheiro na área de trabalho, pergunte ao seu instrutor.
2. para recolher um EMG: a cobaia deve estar sentada e as pernas e os pés relaxados. Pressione Iniciar na parte inferior direita da tela. Levemente levante os dedos dos pés do sujeito para esticar o tendão de Aquiles na parte de trás de sua perna, e rap firmemente o tendão de Aquiles do sujeito com a parte preta de borracha do martelo. Grava vários EMG, batendo na parte preta de borracha do martelo no tendão de Aquiles e observando o reflexo Em Ch. 3. Repita até ter 3 EMGs representativos.
3. quando tem um bom conjunto de 3 EMGs (ver Fig. 9.2), medir o tempo com o cursor desde o início do estímulo (em zero) até o meio do primeiro pico. Repetir em gravações diferentes e em média três.Regista os dados no manual do teu laboratório e na folha de cálculo fornecida pelo teu instrutor.
4. Use a fita métrica para medir a distância, em centímetros, do ponto de impacto no assunto do tendão de Aquiles para o ponto aproximado em que a caixa torácica atende a coluna vertebral (por exemplo, o comprimento do nervo sensorial) e, em seguida, para baixo para o primeiro eletrodo no gastrocnêmio (i.é., o comprimento do motor do nervo). Consulte o PowerPoint slide fornecido pelo seu instrutor para um diagrama de como fazer esta medição.
5. registar o comprimento e, em seguida, calcular e registar a velocidade de condução.

Fig. 9.2. Uma amostra de um EMG gravado no computador usando PowerLab. O sinal de gatilho está na entrada 1 (Ch 1) no tempo 0 e o EMG está no Ch 3 (chamado sinal Bruto). Coloque o marcador ” M ” no topo do primeiro pico do EMG. A hora exibida indica o tempo decorrido entre o sinal de trigger e o gastrocnêmio resposta, i.e. o tempo tomado pelo potenciais de ação para propagar ao longo da neurônios sensoriais do nervo ciático para a medula espinhal e ao longo dos neurônios motores para a primeira (superior) eletrodo do gastrocnêmio.Um potencial de ação é iniciado no nervo ciático dissecado de uma rà (Rana pipiens ou Xenopus laevis) por um estimulador (um dispositivo para fornecer estímulos elétricos precisos). O potencial de ação viaja ao longo do nervo e é detectado ao passar dois eletrodos externos (de acordo com o método 2 descrito na introdução) e a resposta detectada é amplificada e exibida na tela do computador. O traço no computador de estímulo e resposta é desencadeado pelo estímulo; o tempo e a distância são medidos e a velocidade pode então ser calculada.

potencial de Acção composto: um nervo é uma coleção dos axônios de muitos neurônios. Os axônios podem ter espessuras diferentes e, portanto, seus potenciais de ação terão tamanhos e velocidades diferentes. O potencial de ação, Registrado a partir do exterior do nervo (extracelularmente) é conhecido como um potencial de ação composto, e representa a soma dos potenciais de ação disparados por neurônios individuais. (ver Fig. 9.3 A).

Fig. 9.3. A, Diagram of a bifasic action potential as an extracelular recording of a nerve. O estímulo é aplicado na extremidade esquerda do nervo. B, visão Dorsal da rà exposta do membro traseiro esquerdo e da coluna vertebral.O nervo ciático é o grande nervo que corre da medula espinhal para o músculo gastrocnêmio. Contém neurônios sensoriais e motores (é o nervo que é estimulado quando você estica o tendão de Aquiles humano). Neste laboratório, a rà terá sido anestesiada, sacrificada e com dois dentes (o cérebro e a medula espinhal terão sido destruídos). Pode ter necessidade de remover a pele.

para dissecar o nervo ciático

1. separe suavemente os músculos dorsais da coxa com os dedos e utilize uma sonda de vidro para revelar o nervo ciático branco e os vasos sanguíneos que os acompanham(ver Fig. 9.3 B). Libertar o nervo do tecido circundante na coxa usando um gancho de vidro rombo. Corte o músculo e o tecido conjuntivo à volta do nervo enquanto mantém o nervo fora do caminho. Tente não esticar o nervo e evitar tocar o nervo com qualquer coisa de metal para evitar danificar o nervo.
2. manter o nervo húmido com Ringer anfíbios (uma solução que contém íons na mesma concentração que no sangue da rÃ).
3. amarrar um fio firmemente em torno da extremidade do joelho do nervo. Em seguida, corte o nervo abaixo da corda e o mais próximo possível do joelho.
4. levemente elevar o nervo levantando o fio e, em seguida, dissecar o nervo para sua origem na medula espinhal. Tome grande cuidado com esta dissecação, especialmente na área pélvica. Manter o nervo húmido com Ringer até estar pronto para ser colocado na câmara nervosa.

configurar a Câmara nervosa

1. abrir o ficheiro da tampa da rã no ecrã. Colocar suavemente o nervo sobre os primeiros cinco ou seis eléctrodos a partir do lado esquerdo da Câmara (ver instrutor). A extremidade nervosa do lado esquerdo da câmara deve ser a extremidade anterior do nervo. As extremidades anterior e posterior do nervo são codificadas por cor com corda. Consulte o seu instrutor se não tiver a certeza do código de cores. Cubra a câmara nervosa com a tampa de plástico e certifique-se de que o nervo ainda está em contacto com os fios após fechar a tampa. Conecte os eletrodos estimulantes e de gravação como você vê nas fotos abaixo. Você também terá uma cópia da foto na pasta azul em seu banco. Verifique o seu arranjo de eléctrodos com o seu instrutor antes de prosseguir.

para registar um potencial de Acção composto

1. verifique se o ficheiro está definido para começar com uma estimulação de 0, 05 V (altura do pulso). Para estimular o nervo nesta configuração inicial, pressione o botão Iniciar na parte inferior direita da tela.
2. agora aumenta a altura do pulso (estímulo) em intervalos de 0,05 V clicando na seta para cima. Não mudes o máximo. valores da velocidade de repetição (atraso) ou da largura do impulso (duração) para esta parte do ensaio. Tudo o que vai mudar é a altura do pulso (voltagem). Quando você clicar na seta para cima, a amplitude irá aumentar em 0,01 V com cada clique, então você terá que clicar nesta seta várias vezes. Pressione Iniciar e observar o traço na tela. Continue a aumentar a voltagem em 0.5 V incrementos.
3. eventualmente, no limiar, o potencial de Acção composto deve começar a aparecer como uma deflexão na linha de base.
4. Gravar a tensão de limiar (pulse height)
5. Continuar a aumentar gradualmente a tensão (mas nunca aumentar acima de 1 V) até que a amplitude do potencial de ação composto cessa de aumentar (indicando que o máximo número de fibras nervosas são de responder) . Como tensões mais fortes estimulam axônios adicionais, o potencial de ação composto vai crescer em amplitude.
6. quando tiver dois potenciais de Acção compostos que atinjam a mesma amplitude de pico (próximo se fino), registe a tensão.
7. Escolha uma tensão ligeiramente abaixo do máximo. Gerar um potencial de ação a esta tensão. Medir o tempo com o cursor desde o início do estímulo até o meio do primeiro pico da resposta bifásica (ver figura 9.4). Registre isto como a latência (o atraso entre um estímulo e a iniciação de uma AP) em sua tabela de dados. Gerar mais dois potenciais de ação nesta mesma tensão e registrar seu valor de latência.
8. verificar a distância entre o segundo eléctrodo estimulante e o primeiro eléctrodo de registo (deve ser de cerca de 5 mm com este aparelho). Usando esta distância e os seus valores de latência registados, calcule a velocidade de condução para todos os três ensaios e average os seus resultados para obter uma velocidade média de condução.

como pode a resposta aumentar em amplitude quando um potencial de ação tem propriedades “todas ou nenhumas”? Este fenômeno de resposta gradativa ilustra as diferenças de limiar que existem entre os diferentes tamanhos de fibras que compõem o nervo. Lembre-se, você está gravando de um nervo, um grande pacote de neurônios, cada um com um limiar diferente. Se a voltagem do estímulo for aumentada lenta e suavemente, você pode observar saltos discretos na amplitude do potencial de ação composto como diferentes classes de limiar de fibras nervosas são “recrutadas”. À medida que você aumenta a amplitude, mais neurônios atingem o seu limiar e contribuem para o aumento do tamanho do potencial de ação composto. Eventualmente, à medida que a tensão de estímulo é aumentada, um ponto será alcançado quando a forma de onda do potencial de ação pára de mudar. Neste ponto, todas as fibras no nervo capazes de responder ao estímulo estão sendo estimuladas (Fig. 9.4). Esta é uma resposta máxima.

grave e salve todos os seus ensaios no ambiente de trabalho. É uma boa idéia para salvar dados com freqüência (sob o Arquivo: Salvar como menu) –na pasta de curso de laboratório no desktop). Certifique-se de incluir sua seção animal e laboratório no seu nome de arquivo.

Fig. 9.4. Um exemplo de potencial de ação composto (vestigios superiores) em aumento da força do estímulo (vestigios inferiores) Registrado a partir do nervo ciático de um sapo usando o software LabChart 8. Os traços correspondentes a múltiplas gravações são sobrepostos. Estímulos de maior força produzem potenciais de ação de compostos bifásicos de maior amplitude.

Para Medir o Período Refratário
Quando dois estímulos são aplicados para o nervo em sucessão muito rápida, de alguns ou de todos os neurônios que compõem o nervo são incapazes de responder ao segundo estímulo, porque os canais de sódio são inativadas. São refratários ao segundo estímulo.

1. abrir o ficheiro refractário de rãs. A altura do pulso (amplitude/tensão do estímulo) é pré-definida neste arquivo em 0.5 V e não será alterada durante esta parte do experimento.
2. verifique se a largura do intervalo de impulsos (o intervalo entre os dois impulsos de estímulos) está fixada em 7 ms para começar.
3. Press start.
4. devem aparecer dois potenciais de acção da mesma altura, separados por 7 ms (Fig. 9.5).
5. agora diminuir a largura do intervalo de impulsos (intervalo de estímulo) entre os dois estímulos em 0.5 ms passos clicando na seta para baixo. À medida que você diminui a largura do intervalo de pulso entre os estímulos, a amplitude do potencial de segunda ação começa a diminuir. Grava a largura do intervalo quando observar esta diminuição. Este atraso representa o período refratário relativo do nervo. O que se passa?
6. continuar a diminuir a largura do intervalo do pulso. Note que você pode precisar diminuir em intervalos menores à medida que os pulsos se aproximam.
7. Note o tempo em que o potencial de segunda ação desaparece, todos os neurônios são refratários ao segundo estímulo.

Fig. 9.5. Potenciais de ação composta estimulados por pulsos gêmeos demonstram o período refratário no nervo ciático de um sapo. Os vestígios obtidos de várias gravações usando LabChart 8 são sobrepostos.

limiar de condução e velocidade nos nervos de minhoca

nota: partes deste procedimento são modificadas a partir de um protocolo escrito por membros da equipe de ADInstruments, e fornecido com a compra da instrumentação PowerLab.
as minhocas comuns têm um sistema de fibra gigante constituído por uma única fibra gigante mediana e duas fibras gigantes laterais. As duas fibras laterais são ligadas por numerosas conexões cruzadas e funcionam como um único axon.

instalação Experimental

1. coloque a minhoca numa placa de Petri contendo 10% de etanol em soro de minhoca. Permitir que a minhoca fique totalmente anestesiada (isto é, até parar de se mover mesmo quando sondada); verificar após 10 minutos e muito 5 minutos depois disso. coloque o verme na bandeja de dissecação e toque na cabeça ou na cauda, se você vir movimento coloque o verme de volta na anestesia.
2. verificar a ligação do fio (ver Fig. 9A)
3. coloque a minhoca dorsal (escura) de lado na bandeja de dissecação. Colocar a extremidade da cabeça (com o clitellum ) no topo do tabuleiro (Fig. 9.6). Tenha cuidado para não esticar a minhoca muito longe, pois isso pode danificar o cordão nervoso.Coloque dois pinos estimuladores cerca de 2 cm abaixo do clitelo. Liga os circuitos do estimulador que vêm do laboratório de energia aos pinos de dissecação. O chumbo negativo (cátodo, preto) deve ser posterior ao chumbo positivo (ânodo, vermelho).
4. os três eléctrodos de gravação (G, R1, R2) são fios de prata clorados. Insira-os suavemente no verme como mostrado na Fig. 9.6B na ordem de G, R1, R2 na seção central do corpo do verme abaixo do eletrodo negativo. Os pinos podem ser colocados bastante próximos uns dos outros. Posicione o eletrodo R2 cerca de 0,5 a 1 centímetro posterior ao eletrodo R1.
5. medir a distância em mm entre o segundo eléctrodo estimulante (cátodo negro) e o primeiro eléctrodo de Registo (R1) e registar esta medição. Esta é a distância que o potencial de ação percorreu durante a gravação.Pode ser necessário humedecer periodicamente toda a minhoca com a solução a 10% de etanol/solução salina utilizando um conta-gotas. Borra o excesso de soro do verme com um tecido de papel.

Uma Configuração Do Powerlab Do Worm B

Fig. 9.6. Uma configuração PowerLab para gravar os potenciais de acção da minhoca B. Anatomia da minhoca e colocação de eléctrodos na minhoca

determinação da tensão limite para os axões mediais e laterais, cálculo , velocidade de condução e observação do Recrutamento do gigante lateral axon

1. Abrir Ficheiro WormAP no computador.
2. clique em Iniciar. A mira mostrará uma varredura. A deflexão logo após o início da varredura é causada pela propagação de parte da tensão de estímulo para os eletrodos de gravação. Chama-se artefato de estímulo.
3. aumenta a produção em 0.5 volts, clicando na seta para cima da Amplitude no Stim. Painel.
4. repetir os passos 2 e 3 aumentando a Amplitude em 0, 05 volts em cada ensaio até ver uma resposta do gigante mediano axon.
5. quando se vê uma resposta do axon gigante mediano (Fig. 9.7), registar o valor limiar. Se não vir uma resposta e estiver a utilizar um estímulo superior a 1V, peça ajuda.
6. continue a aumentar o estímulo até observar uma segunda resposta com um período latente mais longo(Fig. 9.7). Clique em Parar e gravar este limiar para as fibras gigantes laterais.
7. Salve o seu ficheiro para o ecrã.
8. para calcular a velocidade de condução, coloque o marcador No início do artefacto de estímulo e o Cursor de onda no pico do potencial de ação (Fig. 9.7). Leia a diferença de tempo na parte superior da janela de escopo.
9. divida a distância (previamente medida) entre o estímulo e os eléctrodos de Registo pela diferença de tempo entre os picos para determinar a velocidade de condução em mm/ms que é facilmente convertida em m/s.

Fig. 9.7. Registo electrofisiológico da medula ventral da minhoca, mostrando potenciais de acção das fibras gigantes medianas e laterais.

10. Elimine o seu ficheiro ou coloque-o na pasta para a sua secção de laboratório.

ATRIBUIÇÃO

Material neste laboratório serão incluídos no laboratório prático (juntamente com o material de laboratórios 7 & 8) . Certifique-se de que compreende os conceitos, cálculos, testes estatísticos e gráficos abrangidos.Resultados:
Use dados de toda a classe para comparar as velocidades médias de condução dos três nervos examinados hoje. Conduzir uma ANOVA comparando a velocidade de condução (m/s) dos nervos de humanos, sapos e minhocas. A diferença é significativa no nível de probabilidade de 0,05? Parece haver uma diferença na condutividade nos nervos do ser humano, sapo e minhoca?

discussão:
os dados recolhidos neste laboratório podem ser comparados com taxas de condução previamente documentadas dos nervos de uma grande variedade de vertebrados e invertebrados. Os seus dados são consistentes com este conjunto de dados mais amplo?

Fig. 9.8. Velocidade da condução do impulso nervoso como uma função do diâmetro da fibra em uma variedade de animais. Modificado a partir de Bullock e Horridge, 1965, estrutura e função do sistema nervoso dos invertebrados. W. H. Freeman and Company.

outros laboratórios nesta secção

Lab 7: Anatomia de vertebrados
Lab 8: circulação e respiração de vertebrados